El Acuariofilo

Corydora leopardo: corydora julii

2015-05-24T19:56:00.001-07:00

Nombre científico: Corydoras Julii

Clasificación:

• Orden: Siluriformes.

• Familia: Callichthyidae.

• Subfamilia: Corydoradinae.

Biotopo: Amazónico

Distribución: Curso inferior del Amazonas, al oeste de Belem y ríos costeros al noreste de Brasil

Esperanza de vida: Entre 5 y 15 años.

Forma:

La forma del cuerpo está adaptada a la vida sobre el sustrato, cabeza más grande y cuerpo ahusado hasta la cola, aplanado en la parte ventral. Dispone de placas óseas solapadas que la cubren y le dan un aspecto de pez blindado (el nombre Corydoras viene del griego Kory (casco) y doras (piel)).

Tienen una aleta adiposa, característica de la especie, detrás de la aleta dorsal. Las aletas pectorales y dorsal presentan un primer radio duro en forma de espina. Como muchas de las variedades de corydoras, cuentan con una espina corta debajo de cada ojo. Estas espinas en su medio natural son defensas frente a los depredadores que pretendan tragarlas. En nuestros acuarios deberemos tener cuidado a la hora de manipularlas con el salabre, ya que pueden quedar enganchadas y provocarles algún daño.

Coloración:

De tonalidad grisácea o plateada, resalta sobre ella un punteado negro característico de esta variedad. Dicho punteado es más apreciable en la cabeza y no tan fácil en el resto del cuerpo. A lo largo de los costados podemos observar una alineación de puntos conformando una línea, más o menos definida, que nos lleva hasta la aleta caudal. La parte superior de la aleta dorsal presenta una gran mancha negra.

En el mercado frecuentemente nos presentan esta variedad cuando en realidad nos están ofreciendo corydoras trilineatus. Observando con detenimiento podemos observar como el patrón de punteado de las trilineatus es realmente un conjunto de puntos unidos que conforman pequeñas líneas y no los puntos característicos de las julii.

Tamaño: En torno a los 5 cm.

Diferencias sexuales:

El macho es más pequeño y ahusado que la hembra, y está tiene un vientre más abultado. La diferencia se puede percibir más fácilmente observándolas desde la superficie.

Acuario:

Tamaño mínimo del tanque, unos 50L para mantener un cardumen de ellas en condiciones. El sustrato deberá ser fino ya sea grava o arena, un sustrato grueso y afilado puede dañar sus barbillones y con ello perjudicar su búsqueda de comida y la manera de relacionarse.

Temperatura:

Entre 23 y 26º será el rango de temperaturas a las que se encuentren en mejores condiciones.

Agua:

Ph entre 6 y 7,5 y aguas desde blandas a media entre 3 y 15º.

Decoración:

Si queremos imitar un biotopo amazónico que es en el que se encuentran en la naturaleza, deberíamos recurrir a un sustrato de arena fina, troncos flotantes y en el sustrato para asemejar las raíces de los arboles que encuentran en su hábitat, sobra decir que estos deberán estar desprovistos de corteza y cualquier parte blanda que vaya a sufrir infestación de organismos xilófagos, hongos o similares. Con el fin de dar una tonalidad ambarina al agua, podemos además usar turba o introducir hojas tipo roble indio -Terminalia catappa- , haya,…. Eliminando las hojas viejas conforme se vayan deteriorando y pudriendo.

También es posible instalarlas en un acuario más plantado, teniendo en cuanta que prefieren una iluminación tenue.

Alimentación:

Omnívoro. Aceptan de buena gana gran variedad de alimentos que llegan hasta el sustrato, lugar por donde se desenvuelven. Desde las papillas comerciales o caseras, para otros compañeros de acuario, hasta alimento vivo pasando por granulo, tabletas para peces de fondo, espirulina, escamas, calabaza, calabacín,..

Está mal extendida la creencia que como peces de fondo se alimentan de desperdicios, realmente no está dentro de su dieta. Además es preciso mantener el fondo del acuario limpio de excesos de restos de comida ya que su descomposición generará problemas a las condiciones del agua y por descontado a su salud.

Comportamiento:

Tranquilo y pacífico, ideal para mantener en acuarios comunitarios con ausencia de peces grandes y agresivos. Perfectos para mantener con pequeños carácidos, ciprínidos, cíclidos enanos, discos, laberíntidos y anabántidos,.. además de otras especies de peces de fondo.

Debemos mantenerlas en grupos no inferiores a 6 individuos, el cardumen les da seguridad y se muestran más activos

Reproducción:

No hay constancia sobre su reproducción en cautividad, los casos que se han podido presentar eran de la variedad trilineatus mucho más frecuente en el mercado.

En el supuesto de disponer realmente de especímenes de esta variedad las condiciones de reproducción no variarán mucho de las de las otras especies.

Preferiblemente acondicionar un habitáculo con ausencia de depredadores ya sea de huevos o de alevines, utilizar un filtro de esponja para no aspirar a los alevines cuando eclosionen los huevos (3-5 días después de la puesta)

Realizar cambios frecuentes de agua, mantenerlas a temperatura normal de 26-28º y tras un breve periodo bajarla con los cambios de agua a unos 24º, aumentar la oxigenación, de esta manera se les hace creer la llegada de la época de lluvias. Repetir esta rutina hasta conseguir que desoven.

Podremos observar la posición en T en el que el macho es el palo horizontal y la hembra el vertical. Esta última extrae el esperma y lo hace llegar a los huevos a través de su cuerpo, los mantiene entre sus aletas pélvicas en pequeños grupos de 4-6 huevos que irá pegando por los cristales, decoración, hojas, calentadores y toda aquella superficie que estime suficientemente oxigenada, desentendiéndose inmediatamente de la misma. Una vez depositada una de estas puestas el baile entre el macho y la hembra se irá repitiendo, diseminando esta última los huevos por toda la urna.

Tras hacer la puesta quedan deberemos o retirar a los adultos para evitar que estos puedan llegar a comerse la puesta o sacar los huevos (se endurecen enseguida) y colocarlos en un recipiente con agua de la propia urna, un oxigenador y unas gotas de azul de metileno para evitar la proliferación de hongos.

Los huevos eclosionan a los 3-5 días., Vienen al mundo con un saco vitelino, cuando acaben con el habrá que proveerles de alimento infusorios, artemia (cuidado con ella, retirar todo resto de sal de los nauptilos), micro gusanos, escamas,etc.

Observaciones:

Dada su capacidad de tomar aire directamente de la superficie, podemos verlas como balas ascendiendo y tomando una bocanada, pueden vivir en aguas con una baja oxigenación. Esta toma de aire es perfectamente normal, en su hábitat natural han de adaptarse a la época de sequía y a la baja oxigenación de esas aguas. No es motivo de preocupación siempre y cuando estás no sean excesivamente frecuentes. Toman el aire y lo almacenan en la vejiga natatoria, de ahí pasa al sistema digestivo donde es asimilado por el organismo, los residuos gaseosos son rechazados por el ano.

Al ser bentónicos son de los primeros en detectar una mala calidad del agua en su zona y una acumulación de desechos, hará que suban a respirar frecuentemente.

Los corydoras son sensibles a la sal al igual que otros peces que carecen de escamas.

Tienen un sentido del olfato y tacto muy desarrollado en los barbillones lo que les permite detectar la comida escondida por el sustrato.

De ojos móviles y grandes que en el medio natural utilizan para seguir observando los alrededores mientras se alimentan, pueden sorprendernos con el movimiento que puede llegar a realizar

Como queda comentado en el apartado sobre la forma, su manipulación mejor con salabre antes que manualmente; las espinas duras que tiene bajo los ojos, aletas dorsales,… en caso de pinchazo nos provocará una molesta pero inofensiva irritación en la piel.

Pez cebra o Danio: danio rerio

2015-05-24T19:20:00.001-07:00

Nombre científico: Danio rerio

Peces cebra mercurio y verde

Biotopo y distribución: Ríos de aguas lentas y lagunas de la India y Bangladesh.

Forma y tamaño: El cuerpo de estos peces es alargado, y no excesivamente aplanado, con aleta dorsal. Alcanzan un tamaño máximo de 6cm. Su boca está dispuesta hacia arriba. El color de estos peces es plateado o dorado de base, presenta por encima de este color de base de 5 a 9 franjas azules que atraviesan su cuerpo longitudinalmente. Por este motivo su nombre común es pez cebra.

Coloración y diferencias sexuales: Los machos alternan las bandas azules con las doradas; mientras que las hembras las tienen azules y plateadas. El vientre es de color claro. Las hembras son más robustas, con el vientre más abultado y las líneas laterales de color plata. Los machos son más estilizados y las líneas laterales son doradas.

Características del acuario: Se aconseja mantenerlos en acuarios con espacio suficiente para que se desplacen, debido a que son grandes nadadores y muy veloces. Son peces pacíficos y pueden convivir con casi todas las otras especies; estas características les hacen ideales para el acuario comunitario. Viven a una temperatura ideal, alrededor de los 28ºC, aunque sobreviven relativamente bien entre 20º y 29ºC. Con un pH ideal de 7.3 a 7.5 y dureza de 5º a 15ºdGH.

Alimentación: Son omnívoros, por lo que se le podría teóricamente proporcionar una variedad de alimentos: infusorios a las larvas recién eclosionadas, escamas para alimentación de peces, gránulos, pequeños crustáceos (larvas de artemia, dafnias), tubifex y larvas de mosquito.

Comportamiento: Muy activo y veloz. Es un pez muy sociable y poco agresivo, forma grupos más o menos ordenados y es por lo tanto conveniente mantenerlo en grupos de como mínimo 6 ejemplares. Forman “schools”, grupos de peces que nadan al unísono, cambiando de dirección instantáneamente y sin colisionar entre ellos, maniobrando e impresionando como un cuerpo único frente a los depredadores.

Reproducción: No demasiado complicada en el acuario si se dan las condiciones. La hembra pone hasta 200 huevos en forma continua, se reproducen durante todo el año. A fin de obtener mayor éxito en la reproducción la temperatura debe estar cercana a los 27ºC y se debe brindar una buena aireación al agua mediante los dispositivos comunes. El fondo de la pecera se cubre con grava gruesa, canicas o con una rejilla de plástico, para que los huevos se cuelen entre ellas, y así queden fuera del alcance de sus progenitores, que de otra manera se los comerían.

Una vez concluida esta etapa conviene retirar a los padres, para que cuando las larvitas salgan de los huevos y comiencen a ascender por las paredes de la pecera y luego, a dar cortos nados (al día 4 o 5 post-fecundación), no sean devorados por sus padres. Los huevos son transparentes, no son adhesivos y eclosionan a los tres días. A los dos días post eclosión (luego de que rompen las membranas del huevo) habrán consumido casi todo su saco vitelino, y comenzarán a comerán infusorios, (protozoarios) y ya a la semana se les puede dar nauplios (larvas) de artemia y escamas trituradas.

Expectativa de vida: Es de 3 o 4 años, probablemente más si se le dan las condiciones ambientales y cuidados necesarios.

Barbo denisonii, Torpedo de línea roja: Puntius denisonii

2014-01-29T19:15:00.004-08:00

Nombre común: Torpedo de linea roja, Barbo de denisonii, en English se le suele llamar: Red line torarb, Red line barb, Denison bab, Red comet entre muchos otros.

Nombre científico: Puntius denisonii.

Clasificación:
• Orden: Cypriniformes.
• Familia: Cyprinidae (Ciprinidos).
• Subfamilia:

Biotopo:

Riachuelos y Arroyos pequeños, con poco caudal.

Distribución:

Asia y sur de la India estado de Kerala,especialmente en los ríos Kallar, Chaliar, Kallada, entre muchos otros.

Esperanza de vida:

No determinada.

Forma:

Como bien su nombre lo indica su cuerpo es alargado en forma de torpedo, con una aleta dorsal pronunciada y una aleta caudal que termina en forma de horquilla.

Coloración:

Es uno de los peces mas hermosos del acuario, teniendo un cuerpo con una coloración con tonalidades verdosas y amarillentas, y en su parte inferior muestra un color plateado grisáceo mucho más brilloso, además presenta una franja negra desde su aleta caudal, pasando por su ojo y terminando en su boca, encima de esta tiene una franja roja desde la mitad de su cuerpo y terminando en la boca, ademas este mismo color rojo lo presenta en su aleta dorsal, aunque un poco mas tenue, su aleta caudal presenta en su parte superior e inferior una mancha amarilla de un color vivo, y junto a esta unas ligeramente negras.

Tamaño:

Es un pez de considerable tamaño, llegando a alcanzar los 15 cm (6"), aunque en acuario suele mantenerse mas pequeño.

Diferencias sexuales:

Prácticamente imposibles de distinguir.

Acuario:

No debe ser de un largo menor de 90 cm, ni menor a 200 l, debe de estar abundantemente plantado, dejándole un buen espacio para su natación, donde mostrara todo su colorido y esplendor.

Temperatura:

De 18ºC a 25ºC, aunque se ha logrado mantener a temperaturas ligeramente superiores sin problemas.

Agua:

Preferentemente un ph neutro, pero vive perfectamente a un ph entre 6.5 - 7.5 y un gh 5 - 25.

Decoración:

Abundantemente plantado con plantas robustas y con grandes espacios libres para nadar, donde mostrara todo su colorido.

Alimentación:

Omnívoro, aunque acepta sin ningún problema escamas, gránulos, y otros alimentos procesados, también alimento vivo de pequeño tamaño y frizados. Aceptan de buen gusto diferentes tipos de frutas y vegetales, además de algunos tipos de algas, aunque no son grandes comedores de estas, y siempre respetando las plantas.

Comportamiento:

Es un pez de habitos diurnos, excelente nadador y pacífico, se debe mantener en grupos no menores 4 o 5 ejemplares, donde mostrará su excepcional colorido.

Reproducción:

Hasta el momento parece ser que nunca se ha reproducido en cautiverio.

Observaciones:

Fue descubierto en el año 1865, este pez en la actualidad no es muy común en las tiendas de ventas, por su elevado costo, ya que no es una especie que se pueda reproducir en cautiverio, y esta desapareciendo de su estado natural, por la destrucción de su habitad.

Chupa algas chino albino, pez ventosa, limpia algas siamés: Gyrinocheilus aymonieri

2014-01-29T19:06:00.002-08:00

Nombre común: chupa algas chino, pez ventosa, limpia algas siamés.

Nombre científico: Gyrinocheilus aymonieri

Clasificación:

• Orden: Cypriniformes

• Familia: Gyrinocheilidae

• Subfamilia: Gyrinocheilinae

Biotopo:

El chupa algas chino, habita en arroyos de aguas poco profundas y claras, con una fuerte corriente, utilizando su gran boca en forma de ventosa para anclarse al suelo y no ser arrastrado por esta.

Distribución:

Este pez es originario de la India oriental y también se puede encontrar en Tailandia central.

Esperanza de vida:

La esperanza de vida para estos ejemplares es bastante longeva ya que es de un máximo de 15 años.

Forma:

Con una gran boca con forma de ventosa y dos orificios justo delante de las branquias que le pemite respirar aun estando pegado a las piedras mientras se alimenta, su cuerpo presenta una forma alargada sin presentar apenas compresión lateral, de aspecto cilíndrico.

Coloración:

Existen varios tipos de coloraciones, puesto que existen variedades distintas:

-Gyrinocheilus aymonieri siamés: con el cuerpo de color marrón claro moteado con múltiples puntos negros, una franja marrón más oscura que comienza en los ojos y termina en la cola dividiendo así el pez en dos, cuando son jóvenes esta línea es continua pero al alcanzar la madurez se divide en una serie de puntos casi conectados entre sí, la parte inferior es de color amarillo claro.

-Gyrinocheilus aymonieri gold: con el cuerpo de color amarillo, una franja amarilla mas oscura que al igual que el siamés comienza en los ojos y termina en la cola dividiendo el pez en dos.

-Gyrinocheilus aymonieri albino: esta variante es de color blanco en su totalidad.

Tamaño:

En su hábitat natural este pez es capaz de alcanzar la considerable talla de 25 a 27 cm alcanzando la madurez sexual cuando alcanzan los 12 cm, no obstante en cautividad no suele sobrepasar los 17 cm.

Diferencias sexuales:

No existen diferencias sexuales entre machos y hembras, bien se dice que los machos tienen los barbillones mas desarrollados que las hembras y que estas son un poco mayores y más gruesas que los machos.

Acuario:

Estos peces necesitan un acuario provisto de raíces y troncos porque les gusta esconderse y así poder delimitar su territorio, con una iluminación moderada puesto que son nocturnos, el tamaño de este deberá ser de un mínimo de 90l ya que alcanzan una talla bastante considerable y además tienen un carácter territorial bastante considerable.

Temperatura:

La temperatura para mantenerlos deberá estar comprendido entre los 24 y los 28ºC, ya que si es inferior dejará de alimentarse de las algas.

Agua:

No es un pez que exija mucho, con un ph 6.5 y 7.5 y un gh 12ºd será perfecto para él.

Decoración:

Al tratarse de un pez de fondo deberemos decorar con abundantes troncos y raíces, también se pueden fabricar cuevas con medios cocos lo que le facilitar un escondite perfecto, las plantas que se introduzcan en el acuario deberán de ser de hojas duras y resistente.

Alimentación:

Vegetariana, alimentándose de toda clase de vegetales desde el pepino hasta la lechuga pasando por los guisantes, también le gusta el musgo de java, pastillas de fondo con base vegetal y por supuesto de algas.

Comportamiento:

Muy territorial al llegar a la madurez sexual, mientras que en la infancia y la adolescencia forma grupo con otros individuos de su misma especie. pero una vez alcanzada la madurez se distanciara y defenderá su territorio con bastante fiereza defendiéndolo de cualquier pez que se acerque, por lo que no es recomendable mantenerlo con corys, plecostomus o cualquier otro pez de fondo. su instinto es tan fuerte que incluso al acercarse al acuario y estar en su escondite sacan la cabeza y se muestran desafiantes hacia uno mismo.

Reproducción:

No se conoce resultado positivo de su reproducción en cautividad, ya que resulta extremadamente complicado.

Observaciones:

Pez muy territorial, tampoco se recomienda que este en acuarios de escalares o discos ya que podría adherirse a los costados de estos e infringir heridas.

Protozoarios en peces y su tratamiento

2014-01-22T20:41:00.002-08:00

Son organismos unicelulares y miembros mas pequeños del reino animal en su gran mayoría tienen ciclo directo con excepciones en los parásitos sanguíneos. Los protozoarios son en su mayor parte los representantes de los parasitosen los peces, muchos de los protozoarios son favorecidos por cambios bruscos de temperatura momento en el cual ocurren las epizootias por eso es muy importante frente a cualquier cambio de temperatura realizar tratamientos preventivos sobre todo en peces de acuarios comerciales.

Grupos de Protozoarios

Sarcomastigophora

Se conocen como flagelados y se caracterizan por tener flagelos que son estructuras semejantes a pelos y que tienen apariencia ameboide. Muchos lo confunden como algas por tener el color característico (verde petróleo).

Oodinium sp.

Es un protozoario que atacan a peces tropicales de agua dulce los peces infectados mueren por obstrucción branquial el cuerpo esta cubierto por mucus de color verde petróleo.

Tratamiento

Levantar la temperatura del agua hasta 33ºC

Ciliophora

Los ciliados se caracterizan por tener pequeños pelitos (cilios) por todo el cuerpo estos suelen ser parásitos de peces en agua dulce los cambios bruscos de temperatura favorece su grado de parasitación en los peces por eso es muy importante la prevención. sobre todo en peces de acuario

Ichthyophthiriusmultifiliis “ich”

Responsable de la enfermedad de los puntos blancos en peces de agua dulce estos producen graves daños económicos en cultivo de peces produce graves infecciones generalizadas a nivel de tegumento y branquias ocasionando la muerte de los peces

Tratamiento

–NaCl----------------------300-400gr/100l

–Aquazan...............1gota/5 l, en peces gato 1gota/10 l

Chilodonella sp.

Parasito ciliado de gran importancia afecta a peces de agua dulce sobre todo en peces de acuario tiene forma ovoide y aplanada esta cubierto por filas de cilios, las bajas temperaturas favorecen su virulencia.

Tratamiento

–NaCl -------------------------300-400gr/100l

–FMC -------------------------1-1.5ml/100 l

Trichodina

Son parásitos en forma de discos a diferencia del “Ich” , estos tiene los cilios mas prolongados y tienen unas estructuras quitinosas en el cuerpo que le sirve para perforar los tejidos corporales en los peces, son de rápida locomoción discoidal

Tratamiento

–Acriflavina-----------------5ml/10 l

–FMC -------------------------1ml/100 l

Epistilis

Son protozoarios que forman colonias a manera de hongo es por eso se le denomina la enfermedad del falso hongos estos parasitan peces de agua dulce y suelen afectar a nivel de aletas y branquias.

Tratamiento

–NaCl -------------------------300-400gr/100 l

–FMC -------------------------1ml/100 l

Tetrahymena sp.

La tetrahymenason parásitos que invaden el tejido epitelial y esto se puede notar con la formación de manchas de color gris por todo el cuerpo y que posteriormente le producen ulceraciones y finalmente la muerte de los individuos son característicos en peces de acuario fundamentalmente en rayas.

Tratamiento

–NaCl ------------------------300-400gr/100 l

–Permanganato de potasio –10-15ml/100 l

Muestreo en Peces: información general

2014-01-22T20:16:00.000-08:00

A. BASES GENERALES DE LOS PROGRAMAS DE VIGILANCIA Y CONTROL SANITARIO PARA PECES

1. PATÓGENOS Y ENFERMEDADES ESTUDIADAS

Los patógenos y las enfermedades de peces se incluyen en el Código Sanitario de Animales Acuáticos según las siguientes consideraciones básicas: las enfermedades resisten la terapia o responden escasamente a ella, tienen una distribución geográfica restringida, son de gran importancia socio-económica, y ocurren en especies implicadas en el mercado internacional. Para la lista actual de enfermedades de peces de la OIE, consulte la última edición del Código Acuático. Este Manual de animales acuáticos contiene capítulos sobre enfermedades enumeradas en el Código de animales acuáticos y otros capítulos sobre enfermedades de importancia comercial.

2. ENFOQUE GENERAL DEL CONTROL SANITARIO ANIMAL EN CULTIVOS DE PECES

Un abordaje completo del control sanitario animal en cultivos de peces requiere:

• Una evaluación del estado sanitario de los animales.

• La obligación de reabastecer las instalaciones de aguas libres o cerradas solamente con animales que tengan un estado sanitario superior o igual al de los animales que ya viven en las áreas consideradas.

• La erradicación, cuando sea posible, de la enfermedad mediante el sacrificio de las existencias infectadas, la desinfección de las instalaciones y la repoblación con peces libres de enfermedad y de origen aprobado.

• La notificación por parte de cada país miembro de sus necesidades particulares, además de aquellas consideradas en el Código Acuático, para la importación de animales acuáticos y de productos de animales acuáticos.

Si se siguen los procedimientos anteriores, es posible dar una seguridad adecuada del estado sanitario de los productos de acuicultura en cuanto a las enfermedades especificadas y respecto a su país, zona o lugar de origen.

La emisión de un certificado sanitario por el funcionario adecuado, basado en un informe sobre el estado sanitario y en exámenes de los animales acuáticos, proporciona la seguridad de que los productos de acuicultura de un envío definido se originan en un país, zona, granja o sitio de recolección que está libre de una o más de las enfermedades especificadas que se relacionan en el Código Acuático y posiblemente de otras enfermedades. La evaluación del estado sanitario de las existencias de peces se basa en la inspección de los sitios de producción piscícola y en el examen posterior de muestras en el laboratorio, procedentes de ejemplares de peces tomados de las existencias de una población definida de peces. Este objetivo requiere que las muestras se recojan siguiendo tablas de tamaño de muestreo definidas y que se procesen con base en métodos aceptados.

Para los patógenos de animales acuáticos se aplican varias técnicas. A efectos de análisis y diagnóstico, el Manual de animales acuáticos ha establecido dos tipos de procedimientos de examen que son aceptables para dicho fin: 1) Métodos de análisis, y 2) Métodos de diagnóstico. Los métodos aceptados se indican en cada capítulo de la enfermedad.

B. PROCEDIMIENTOS DE MUESTREO

1. RECOGIDA DE EJEMPLARES DE PECES

1.1. Diagnóstico en una situación de enfermedad

Debería recogerse un número mínimo de diez peces moribundos o de diez peces que manifiesten signos de la enfermedad en cuestión: los peces deben estar vivos cuando se recogen y deben enviarse vivos o muertos al laboratorio, envasados por separado en contenedores cerrados asépticos y refrigerados, o en hielo. Debe evitarse de forma especial la congelación de los peces recogidos. No obstante, es preferible y se recomienda la recolección de muestras de órganos de los peces inmediatamente después de haber sido seleccionados en el sitio de producción, y después guardar y procesar las muestras. Debería unirse a cada muestra una etiqueta de identificación que contenga información sobre el lugar, tiempo, fecha, especie, número de muestras recogidas, estado muerto o moribundo del ejemplar al recogerse, y nombre y datos de contacto del individuo que tomó la muestra.

1.2. Peces con apariencia clínica normal

La recolección de peces debe abarcar un número de ejemplares estadísticamente significativo, pero resulta obvio que la falta de detección de algunos patógenos en la muestra no garantiza la ausencia de dichos agentes en la muestra examinada o en las existencias piscícolas. Esto es particularmente cierto en el caso de poblaciones libres o domesticadas de las que resulta difícil tomar una muestra representativa y aleatoria. Sin embargo, el riesgo de que un patógeno escape al sistema de vigilancia se reduce en las piscifactorías cuyas existencias se han inspeccionado y comprobado para patógenos durante varios años (al menos 2), en la medida en que no se hayan expuesto a una posible recontaminación por peces en vida libre.

Cuando un sitio determinado de producción de peces se dedica a la cría de salmónidos, para los ensayos de Renibacterium salmoninarum y de algunos agentes de enfermedades víricas, es preferible que una de las muestras que se hacen cada año se dedique al análisis de los productos sexuales (esperma y fluido ovárico), que liberan los reproductores en el momento del desove (ver más abajo). Si las poblaciones de peces adultos incluyen peces de diferentes edades, deben seleccionarse para el muestreo los peces de mayor edad.

• Las muestras deben abarcar todas las especies del lugar que sean susceptibles, y en el grupo de muestras debe estar representado cada lote de una especie. Un lote se define como un grupo de la misma especie que comparte un mismo suministro de agua y que se origina de una misma descendencia o población reproductora.

El origen geográfico de las muestras debe definirse con el nombre del sitio de muestreo asociado con sus coordenadas geográficas o con su localización respecto al curso de un río o de un cuerpo de agua.

Si en la población piscícola que se muestrea están presentes algunos peces moribundos, éstos deben seleccionarse con preferencia para la colección de muestras, y el resto de la muestra debe contener peces vivos seleccionados al azar de todas las unidades de cultivo que representen el lote examinado.

• El muestreo debe diseñarse de modo que haga posible la detección

de los animales infectados, con un nivel de confianza del 95%. La siguiente sección suministra información pertinente sobre el muestreo de peces con aleta. El cuadro 1 puede emplearse para calcular el tamaño de la muestra, hasta que se consideren los detalles específicos de cada enfermedad en los capítulos dedicados a las enfermedades individuales en este Manual de

animales acuáticos.

• Como en el caso de los peces infectados clínicamente, deben tomarse muestras de órganos y fluidos tan pronto como sea posible tras la recogida de las muestras de peces. Debe evitarse la congelación de las muestras.

1.3. Especificaciones de muestreo según los objetivos de un programa determinado de vigilancia para peces.

El muestreo debe diseñarse de modo que haga posible la detección de los animales infectados, con un nivel de confianza del 95%. La siguiente sección suministra información pertinente sobre el muestreo de peces con aletas. Para pruebas diagnósticas en que se

ha establecido la sensibilidad y la especificidad, se puede determinar el tamaño de la muestra empleando métodos como el FreeCalc o programas similares. Sin embargo, para aquellas pruebas diagnósticas en las que no se ha establecido la sensibilidad y la especificidad, el tamaño de la muestra debe determinarse por defecto a partir del cuadro 1 del presente capítulo.

Cuadro 1. Tamaño de muestra aleatoria en función de la supuesta prevalencia del patógeno en el lote, adjudicando a la técnica un 100% de sensibilidad y especificidad.

Según Ossiander & Wedemeyer, 1973.

a) Determinación del estado sanitario de una reserva/población de peces en un sitio determinado de inspección

• Cada unidad de cultivo de peces debe inspeccionarse dos veces al año durante dos años en la fase apropiada de la vida del pez, y a veces en la fase apropiada del año, cuando la temperatura y la estación ofrecen la mayor oportunidad de observar signos clínicos y de aislar los patógenos. En cada ocasión, se deben recoger los peces de las especies susceptibles que aparecen en el Código Acuático para la enfermedad en cuestión, a fin de detectar una prevalencia de infección igual o superior al 2% a un nivel de confianza del 95%. Con frecuencia, se toman 150 peces en cada ocasión. Si durante una de las dos inspecciones están presentes los reproductores, se tomarán hasta 150 muestras de fluidos ováricos en dicha unidad de cultivo de peces.

• Si la vigilancia sanitaria de los peces se realiza en poblaciones de peces libres en un sitio determinado de inspección, o en estanques de crianza sin instalaciones de retención, en las que pueden juntarse diferentes cultivos de peces, se deben recoger 150 ejemplares de peces una vez al año durante dos años. En la medida que sea posible, se deben recoger con preferencia los peces de más edad y/o el fluido ovárico de los salmónidos.

• Durante este período de dos años, la unidad de producción pesquera solo puede recibir peces de una unidad cuyo estado sanitario ya haya sido aprobado y sea igual o superior al estado sanitario que se desea para la instalación que está siendo inspeccionada.

b) Mantenimiento del estado sanitario

• Las inspecciones deben continuar dos veces por año después de que una unidad de producción pesquera, incluyendo unidades de producción en estanques equipados con instalaciones de retención, haya sido reconocida como libre de todas o de alguna de las enfermedades listadas en el Código Acuático tras 2 años de vigilancia, con pruebas de laboratorio y con ausencia de cualquier síntoma clínico sospechoso. Un establecimiento de acuicultura que se haya reconocido como libre de infección puede mantener su reconocimiento oficial como libre de infección siempre que se mantengan continuamente las condiciones básicas de bioseguridad.

Un establecimiento de acuicultura que se haya reconocido libre de infección puede interrumpir la vigilancia dirigida y mantener su reconocimiento oficial como libre de infección siempre que se mantengan continuamente las condiciones básicas de bioseguridad.

• La unidad de producción pesquera solo puede recibir peces cuyo estado sanitario sea igual o superior al de los ya presentes.

2. MATERIAL DE MUESTRAS USADO EN PRUEBAS VÍRICAS Y BACTERIOLÓGICAS

El material de muestra depende del tamaño de los animales y del objeto de la prueba, es decir, varía según se trate del diagnóstico de una enfermedad abierta o de la detección de peces que son portadores subclínicos del patógeno.

2.1. Especificaciones según el tamaño del pez

Alevines y crías con saco vitelino: la muestra es el pez entero pero se elimina el saco vitelino si está presente.

Peces de 4 a 6 cm: se toman todas las vísceras incluyendo el riñón. Se puede obtener un trozo del encéfalo tras cortar la cabeza al nivel del borde posterior del opérculo y apretar lateralmente.

Peces de más de 6 cm: se toma el riñón, bazo y corazón o encéfalo.

Reproductores: se toma el fluido ovárico y/o tejidos.

2.2. Especificaciones según el estado clínico

En el caso de infección clínica, además de alevines enteros o vísceras completas, los órganos para muestreo en pruebas de virus son el riñón anterior, el bazo y el corazón o el encéfalo; para pruebas bacteriológicas, el riñón o el bazo; y cuando se muestrea para pruebas del síndrome epizoótico ulcerativo, la piel o el músculo. Se toman muestras de diez peces muertos y se combinan para formar grupos con un máximo de cinco peces cada uno.

Para detectar portadores subclínicos, las muestras pueden combinarse en grupos de hasta cinco peces por grupo. Los grupos de fluido ovárico de cinco peces reproductores no deben superar un volumen total de 5 ml, es decir, 1 ml por reproductor. Estas muestras de fluido ovárico se toman individualmente de cada hembra muestreada y no se recogen después de la puesta de huevos.

Una vez que se han extraído los órganos y/o el fluido ovárico de los peces muestreados asépticamente, se dividen en dos partes si se va a realizar un examen bacteriológico y vírico.

3. TRATAMIENTO GENERAL DE MUESTRAS DE ÓRGANOS O FLUÍDOS PARA EXAMEN VÍRICO

3.1. Transporte y tratamiento de las muestras con antibióticos

Los grupos de órganos o de fluidos ováricos se colocan en viales estériles y se guardan a 4ºC hasta que se realiza la extracción del virus en el laboratorio. La extracción de virus debe llevarse a cabo preferentemente dentro de las 24 horas siguientes al muestreo de los peces, pero es aceptable hasta las 48 horas.

Las muestras de órganos también pueden transportarse al laboratorio colocándolas en viales que contengan un medio de cultivo para células o solución salina equilibrada de Hanks (HBSS), con antibióticos que se añaden para evitar el crecimiento de contaminantes bacterianos (un volumen de órgano en al menos cinco volúmenes de líquido de transporte). Las concentraciones adecuadas de antibióticos son: gentamicina (100 μg/ml) o penicilina (800 Unidades Internacionales [UI]/ml) y estreptomicina (800 μg/ml). También pueden incorporarse al medio de transporte los compuestos antifúngicos Mycostatin® o Fungizona® a una concentración final de 400 UI/ml.

Para estabilizar los virus, si el tiempo de transporte supera las 12 horas, se puede añadir suero o albúmina (5-10%).

3.2. Extracción de virus

• Este procedimiento se realiza por debajo de 15ºC, y preferiblemente entre 0 y 5ºC.

• Se decanta el medio suplementado con antibióticos del órgano de la muestra.

• Se homogeneiza los grupos de órganos en medio de transporte a una dilución final de 1/10 utilizando un mortero con mano o un homogeneizador eléctrico hasta obtener una pasta.

• Se centrifuga el homogeneizado en una centrífuga refrigerada a 2-5ºC y 2.000-4.000 g durante 15 minutos, recoger el sobrenadante y tratarlo cuatro horas a 15ºC, o durante toda la noche a 4ºC, con antibióticos, por ejemplo, con gentamicina 1mg/ml. Si el envío de la muestra se ha realizado en un medio de transporte (es decir, con exposición a antibióticos), puede omitirse el tratamiento del sobrenadante con antibióticos. El tratamiento con antibiótico hace innecesario el filtrar a través de filtros de membrana.

• De modo análogo, las muestras de fluido ovárico pueden tratarse con antibióticos para controlar la contaminación microbiana. En ningún caso las muestras de homogeneizados o de fluidos ováricos pueden diluirse más de dos veces.

• Las muestras de fluido ovárico deben centrifugarse del mismo modo que los homogeneizados de órganos, y los sobrenadantes se emplean directamente para los pasos siguientes.

3.3. Tratamiento para neutralizar virus enzoóticos

En algunos países, con frecuencia los peces son portadores subclínicos de virus enzoóticos, como el virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV), que puede inducir en cultivos celulares susceptibles un efecto citopático (CPE) y, por tanto, complicar el aislamiento y la identificación de patógenos concretos. En tales situaciones, la capacidad infecciosa de los virus enzoóticos debería neutralizarse antes de realizar ensayos para los virus listados en el Código Acuático. Sin embargo, cuando es importante determinar si está presente uno de los virus enzoóticos, las muestras deben ensayarse con y sin la presencia de anticuerpos neutralizantes (NAbs).

NAbs contra los serotipos del birnavirus endógeno y del sobrenadante de prueba. Se deja reaccionar la mezcla durante 1 hora a 15ºC, o durante toda la noche a 4ºC, antes de la inoculación a monocapas de células susceptibles. El título de la solución de NAb empleada (puede ser un suero multivalente) debería ser de al menos 2000 en un ensayo de reducción de placas al 50%

contra los serotipos víricos presentes en el área geográfica dada.

Cuando se considera que las muestras de un país, de una región, de una población de peces o de una unidad de producción están libres de infecciones víricas enzoóticas, puede omitirse este tratamiento del homogeneizado de los órganos.

Este esquema también puede utilizarse para neutralizar otros virus enzoóticos del área que se está analizando.

4. PROCESAMIENTO GENERAL DE MUESTRAS PARA EXAMEN BACTERIOLÓGICO

Como en el caso de las infecciones víricas, se pueden usar los órganos internos como fuente para el aislamiento cuando se sospeche cualquier infección sistémica. Sin embargo, la proliferación activa de microorganismos saprofitos supone una desventaja tan importante que para los exámenes bacteriológicos se emplean tejidos frescos recién tomados. El hecho de que no se puedan añadir sustancias antibióticas al medio de transporte en el que se recogen las muestras refuerza esta preferencia.

Materiales y productos biológicos necesarios para el aislamiento e identificación de patógenos de peces

2014-01-19T11:40:00.000-08:00

1. VIRUS DE PECES

1.1. Líneas celulares de peces

Las siguientes líneas celulares de peces son necesarias para ensayos de los patógenos de peces mencionados en el Código Acuático:

Mojarra oreja azul (BF-2)

Salmón real (CHSE-214)

Epithelioma papulosum cyprini (EPC)

Trucha arco iris (RTG-2)

Carpita cabezona (FHM)

Ronco catire (GF)

Riñón cefálico de salmón (SHK1)

Riñón de salmón atlántico (ASK)

1.2. Medios de cultivo

El medio usado más ampliamente para el cultivo de células de peces es el tradicional medio mínimo esencial de Eagle (MEM) con sales de Earle y suplementado con suero fetal bovino (FBS) al 10%, antibióticos y 2mM de L-glutamina.

No obstante, el medio de Stocker, que es una forma modificada del medio anterior con doble concentración de algunos aminoácidos y vitaminas, se recomienda particularmente para aumentar el crecimiento celular, empleando los mismos suplementos que los arriba indicados más un 10% de triptosa fosfato.

Estos medios se tamponan con bicarbonato sódico, con 0,16 M de tris-hidroximetil aminometano (Tris) HCl o los cortes preferiblemente los cortes con 0,02 M de ácido N-2-hidroxietil-piperazina-N-2-etanosulfónico (HEPES). El uso de bicarbonato sódico se restringe solo a cultivos celulares mantenidos en recipientes de cultivo celular muy bien cerrados.

Alternativamente, para algunas líneas celulares como la SHK1, se puede usar el medio de Leibovitz (L15) suplementado con FBS (al 5 o 10%), L-glutamina (4 mM) y gentamicina (50 μg/ml).

Para el crecimiento celular, el contenido normal de FBS en el medio es del 10%, mientras que para el aislamiento de virus o para la producción de virus el FBS puede reducirse hasta el 2%. De modo similar, el pH del medio de cultivo para el crecimiento de las células es de 7,3-7,4 y se ajusta 7,6 para la producción de virus o para el ensayo de virus.

La composición de la mezcla de antibióticos utilizada con más frecuencia es penicilina (100 IU/ml) y dihidroestreptomicina (100 μg/ml). Si se espera una contaminación por hongos puede usarse Mycostatin (50 IU/ml). Se pueden emplear otros antibióticos y otras concentraciones de antibióticos según la conveniencia del operador dependiendo de la sensibilidad antibiótica de las cepas bacterianas encontradas.

1.3. Controles positivos para virus y preparación de antígeno

a) Nomenclatura de los virus

• Virus de la necrosis hematopoyética epizoótica (EHNV)

• Virus de la necrosis hematopoyética infecciosa (IHNV)

• Virus de la viremia primaveral de la carpa (SVCV)

• Virus de la septicemia hemorrágica vírica (sinónimo, virus Egtved)

• Virus de la anemia infecciosa del salmón (ISAV)

• Iridovirus de la dorada japonesa del Mar Rojo (RSIV)

• Virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV)

b) Poducción de virus

Para la producción de la mayoría de estos virus deben inocularse los cultivos celulares susceptibles (ver las secciones correspondientes en este Manual de animales acuáticos) con multiplicidades de infección (m.o.i.) más bien bajas, es decir, de 10-2 a 10-3 unidades formadoras de placas (PFU) por célula.

Para la propagación de los virus, las temperaturas óptimas son:

• 15ºC para IHNV, VHSV, ISAV y IPNV

• 20ºC para SVCV

• 22ºC para EHNV

• 25ºC para RSIV

c) Conservación y depósito de los virus

• Centrifugar los cultivos celulares infectados a 2-5ºC y 2.000-4.000 g durante 15 minutos, después diluir los sobrenadantes que contienen los virus hasta obtener títulos víricos de alrededor de 1-2 × 106 PFU/ml.

• Distribuir las suspensiones víricas resultantes en viales estériles conteniendo 0,3-0,5 ml cada uno.

• Congelar y almacenar cada serie de stock de virus estándar a –80ºC o en nitrógeno líquido, y comprobar su título vírico a intervalos regulares si no se han empleado durante mucho tiempo.

Liofilización: el almacenamiento de las muestras de siembra de las cepas de virus estándar a largo plazo (décadas) se realiza por liofilización. Con este fin, antes del proceso, las suspensiones víricas en el medio de cultivo celular suplementado con FCS al 10% se mezclan (v/v) con un volumen igual de medio de crioconservación (como, por ejemplo, hidrolizado de lactoalbúmina al 20% en agua destilada). Los liófilos se sellan o se taponan al vacío y se guardan a 4ºC en la oscuridad.

2. BACTERIAS DE PECES

2.1. Medios de cultivo

Pocas especies de bacterias patógenas de peces requieren medios especiales de cultivo, y la mayoría de las peptonas que se utilizan normalmente para aislamiento (tripsina-soja, cerebrocorazón, etc.) pueden emplearse adecuadamente. Sin embargo, las bajas temperaturas óptimas de algunas especies causan un crecimiento lento, y durante el aislamiento se obtienen con frecuencia colonias pequeñas. En estos casos, para mejorar el cultivo se suelen añadir factores de enriquecimiento, como suero o sangre al 5-10%. Contrariamente, Renibacterium salmoninarum es un organismo muy difícil de crecer y requiere medios especiales enriquecidos con cisteína (No. A11B).

En el caso de los peces, la bacteriología se lleva a cabo a temperaturas entre 20 y 26ºC. Resulta a veces útil o necesario tener acceso a diversas estufas. Renibacterium salmoninarum, Flavobacterium psychrophilus y otras bacterias necesitan 15ºC para un crecimiento óptimo, y muchas de las bacterias aisladas de peces de agua caliente pueden incubarse a 30ºC para acelerar las etapas del diagnóstico.

2.2. Almacenamiento de los cultivos

Las cepas bacterianas se pueden guardar a corto plazo en medios ordinarios, manteniendo los tubos con agar inclinado o los cultivos líquidos a 4ºC. Para muchas cepas, el uso de medios comerciales o de cultivo en agar inclinado, recubiertos con una capa de aceite mineral, extiende la viabilidad a 1-2 años manteniendo las mismas condiciones sin especiales requisitos adicionales.

La congelación es probablemente el mejor modo de conservar las suspensiones bacterianas de títulos elevados. Sin embargo, no siempre evita que cambien algunas características fenotípicas.

Cuando es importante la estabilidad de alguna característica, como la virulencia, puede ser mejor emplear la liofilización, aunque el número de bacterias viables puede descender notablemente. Se han propuesto diversas clases de aditivos para mejorar la eficacia de la congelación y de la liofilización, en el primer caso principalmente glicerol (5-15%), y en el segundo leche desnatada, lactosa o dextrano (5-10%). No hay una regla general, y las condiciones más convenientes tienen que determinarse para todas las especies en ensayos previos. La adición a cultivos frescos de un volumen de aditivo que contenga Bactopeptona al 11% + Dextrano al 4% ha proporcionado excelentes resultados en la liofilización de algunas bacterias de peces, pero en muchos casos merecen ensayarse otras fórmulas.

3. SEROLOGÍA

3.1. Producción de antisueros de conejo y de anticuerpos policlonales contra virus de peces

Hay varios modos de obtener anticuerpos de conejo contra virus de peces. No obstante, el título y la especificidad están influenciados por el programa de inoculación utilizado. Los siguientes protocolos de inmunización se pueden emplear para producir antisueros para uso en el aislamiento de virus y/o en procedimientos de identificación que se describen más tarde.

a) Antisueros contra el virus de la necrosis pancreática infecciosa

Inyección intravenosa el día 0 con 50-100 μg de virus purificado, seguida de una inoculación idéntica de recuerdo el día 21, y sangría 5-7 días más tarde. Los conejos pueden reutilizarse si la sangría no es completa.

b) Antisueros contra otros virus

Los protocolos de inmunización alternan una inyección intramuscular o intradérmica con posteriores dosis intravenosas de recuerdo:

Día 0: inyección primaria, se mezcla (v/v) 500-1.000 μg de virus purificado con adyuvante (adyuvante incompleto de Freund u otros ) hasta un volumen total de 1,2 ml. Este antígeno se inocula en el conejo mediante inyecciones intradérmicas multipuntuales (20 puntos en cada lado) después de que el animal haya sido afeitado.

( El uso de adyuvante completo de Freund puede estar restringido en base a consideraciones de protección animal. Los adyuvantes alternativos sintéticos son trehalosa dimicolato y monofosfato del lípido A.)

Día 21: se recogen aproximadamente 20 ml de sangre y se prueba su reactividad (neutralización, fluorescencia); se reinocula intravenosamente con la misma cantidad de virus purificado que en la inyección primaria, pero sin adyuvante.

Antes de la inyección intravenosa de recuerdo, se debe tratar el conejo con promotazina (12 mg, intramuscularmente) para evitar una posible respuesta anafiláctica.

Día 28: se toma una muestra de sangre, se comprueba la reactividad del suero y se sangra o se vuelve a inocular según los resultados.

Este procedimiento de inmunización es muy adecuado, en el caso de los rabdovirus, para producir antisueros que se utilicen en pruebas de inmunofluorescencia y en enzimoinmunoensayos (ELISA). Sin embargo, un método más eficaz para la producción de antisueros neutralizantes es la inyección regular intravenosa sin adyuvante (0,2 ml) cada 3–4 días (dos veces a la semana). Pueden ser necesarias hasta 15 inyecciones; 1 semana después de la última inyección, se debe recoger una muestra de suero y probarla.

3.2. Antisueros contra bacterias de peces

Todavía resulta difícil obtener de fuentes comerciales sueros antimicrobianos en grandes cantidades, y a menudo será necesario preparar dichos antisueros. Los métodos generales son los mismos que para los virus. Con frecuencia los antígenos bacterianos se usan como preparaciones crudas de bacterias muertas por calor o por formalina (0,35% de formalina). La inoculación al conejo en dosis crecientes puede ser intramuscular, cada semana, con adyuvante la primera vez, o intravenosa en intervalos de 3–4 días y sin adyuvante. A menudo se requiere una inyección de recuerdo después de 15 días.

Para producción de sueros anti-Renibacterium resulta muy eficaz un programa especial de inoculaciones intradérmicas multipuntuales, y es también útil para otras bacterias de baja antigenicidad en conejos.

El antígeno son bacterias muertas por calor (60ºC, 45 minutos) y se ajusta a 2 mg/ml. Los costados de los animales se afeitan cuidadosamente, y se realizan inyecciones intradérmicas multipuntuales utilizando cantidades totales de 1mg de bacteria por animal, de acuerdo con el siguiente programa:

Día 1: 1 mg + adyuvante completo de Freund (CFA) (v/v)

Día 21: 1 mg + adyuvante incompleto de Freund (IFA) (v/v)

Día 42: 1 mg + IFA

Día 63: 1 mg de antígeno

Día 68: Recolección de muestras de sangre (unos 30 ml)

Las inyecciones de recuerdo y las sangrías para recoger suero pueden repetirse a intervalos de 1 mes.

3.3. Procesamiento y depósito de sueros inmunes

Después de la coagulación de la sangre, se recoge y centrifuga el suero a 20ºC y se calienta durante 30 minutos a 56ºC. El suero resultante tratado por calor se filtra a través de un filtro de membrana (tamaño de poro 450 nm) y se guarda temporalmente a 4ºC durante el tiempo necesario para el análisis de su reactividad y especificidad, y para probar que estas propiedades no se afectan por las condiciones de conservación (por ejemplo, congelación o liofilización). Los sueros estériles de conejo se pueden mantener al menos 2 meses a 4ºC sin ningún cambio en sus propiedades. Se distribuye (normalmente en pequeños volúmenes) y se congela a –20ºC o se liofiliza.

Las inmunoglobulinas (Ig) se pueden extraer de los antisueros por métodos convencionales apropiados para la purificación de Ig. La unión selectiva a la proteína A constituye un método fiable y eficaz. La concentración de las soluciones de Ig se ajusta a los valores requeridos para la posterior preparación de conjugados o para el almacenamiento.

Conservación de Ig: Mezclar una solución de Ig de una concentración de 2 mg/litro con glicerol puro estéril (v/v) y mantener a –20ºC. También se pueden preparar soluciones de Ig en glicerol con una concentración más elevada.

3.4. Anticuerpos monoclonales de ratón contra virus y bacterias de peces

En los últimos años se han obtenido anticuerpos monoclonales (MAbs) contra la mayoría de los virus de peces. Algunos de ellos, como MAbs solos o asociados en dos o tres, han originado reactivos biológicos adecuados para la identificación de grupos víricos (IPN, VHS, IHN). Otros MAbs, tomados individualmente o como componentes de combinaciones de Ab, permiten la tipificación exacta de VHSV e IHNV. Estos MAbs se pueden obtener de los laboratorios de referencia citados al final de este Manual de animales acuáticos.

También se ha descrito la producción de MAbs contra bacterias. Ello ha permitido el desarrollo de kits comerciales de diagnóstico para Renibacterium salmoninarum, pero en la mayoría de los casos la producción permanece limitada a laboratorios especializados.

Teóricamente, las IgGs monoclonales de ratón se pueden procesar y guardar como las IgGs policlonales. Sin embargo, la reactividad de algunos MAbs puede alterarse por procesos enzimáticos, de radiomarcaje o de liofilización. Por tanto, es necesario probar los distintos MAbs en las condiciones en que van a ser empleados.

3.5. Uso de técnicas moleculares para pruebas y diagnósticos confirmativos

Se han desarrollado técnicas moleculares que incluyen sondas de ácido nucleico y la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) para la identificación de muchos patógenos de animales acuáticos. Sin embargo, como en el caso de otras técnicas de diagnóstico, las ventajas de sensibilidad se contrarrestan frecuentemente por problemas técnicos de interpretación o susceptibilidad.

Mientras que los métodos basados en el cultivo directo o en la serología son relativamente fiables, la PCR puede ser muy dependiente de las condiciones bajo las cuales se lleva a cabo y muy susceptible a contaminaciones en el laboratorio por productos de PCR previas, originando falsos resultados positivos. Por tanto, aunque en esta versión de este Manual de animales acuáticos se incluyen como métodos de diagnóstico y confirmativos varios protocolos con sondas de ácido nucleico y PCR, siempre que sea posible se especifican, como métodos estándar de análisis, técnicas bien establecidas (por ejemplo, el aislamiento del virus). Cuando se empleen estas nuevas técnicas moleculares, deben realizarse con cuidado y con especial atención a la inclusión de controles positivos y negativos adecuados.

3.5.1. Preparación de muestras

En estas técnicas, las muestras deben prepararse para conservar el ADN del patógeno. De modo similar, las muestras preparadas para pruebas basadas en métodos con anticuerpos deben conservarse para que retengan los sitios antigénicos reactivos frente a los anticuerpos usados.

Las muestras seleccionadas para pruebas de diagnóstico basadas en ADN o en anticuerpos deben manejarse y envasarse con el máximo cuidado para minimizar la potencial contaminación cruzada entre las muestras o la degradación de las mismas antes de poder realizar el ensayo. Para evitar la contaminación, deberían usarse recipientes nuevos (bolsas de muestra o botellas de plástico). En cada envase o contenedor debe colocarse una etiqueta resistente al agua rellenada con los datos apropiados para cada serie de muestras.

Algunos métodos adecuados para la conservación y el transporte de muestras tomadas para pruebas moleculares, o basadas en anticuerpos, son los siguientes:

• Ejemplares vivos helados o refrigerados: en el caso de ejemplares que pueden ser transportados rápidamente al laboratorio para ensayos a realizar en 24 horas, las muestras se envasan en bolsas que se rodean de una adecuada cantidad de hielo húmedo en una caja aislada y se envían al laboratorio.

• Ejemplares completos congelados: se seleccionan ejemplares vivos según el propósito del muestreo, se congelan rápidamente en el campo usando hielo seco machacado, o se congelan en el laboratorio de campo mediante un congelador mecánico a –20ºC o a temperatura más baja. Se prepara e inserta la etiqueta en el contenedor con las muestras, se empaquetan éstas con una cantidad adecuada de hielo seco en una caja aislada y se envían al laboratorio.

• Muestras conservadas en alcohol: en regiones donde es problemático el almacenamiento y envío de muestras congeladas, se puede usar etanol de 90-95% para conservar, guardar y transportar algunos tipos de muestras. Se envasan para el transporte de acuerdo con los métodos que se describen arriba.

• Tejidos fijados para la hibridación in-situ e inmuno-histoquímica: para esta finalidad son adecuados los métodos clásicos de conservación de tejidos. Una buena elección para el posterior uso de sondas moleculares es la solución de Davidson. Específicamente para ADN, se debe evitar una sobre-fijación (más de 24-48 horas).

3.5.2. Conservación de ARN y ADN en tejidos usando RNAlater

El tejido se corta hasta que sea menor de 0,5 cm en una dimensión y se sumerge en 10 volúmenes de solución RNAlater (por ejemplo, una muestra de 0.5 gramos requiere unos 5 ml de RNAlater). Los órganos pequeños, como el riñón, el hígado y el bazo se pueden mantener enteros en RNAlater. Estas muestras se pueden guardar a 4ºC durante un mes, a 25ºC durante una semana o a –20ºC indefinidamente. Los tejidos tratados con RNAlater se mantienen a –20ºC.

3.5.3. Extracción de ADN

Para extraer el ADN, se homogeneizan a polvo los tejidos conservados. Se añaden alrededor de 10 volúmenes de tampón de extracción (NaCl [100 mM], ácido etilendiaminotetracético [EDTA, 25 mM], pH 8, dodecil sulfato sódico [SDS, 0,5%]) junto con proteinasa K (100 μg/ml). Después de incubar durante toda la noche a 50ºC, se extrae el ADN con fenol/cloroformo usando un protocolo estándar, y se precipita con etanol. Teniendo en cuenta las limitaciones de tiempo y los riesgos para el personal de laboratorio, los kits comerciales disponibles constituyen una alternativa técnica satisfactoria. El uso de kits comerciales debería validarse mediante comparación con un protocolo estándar a base de fenol/cloroformo antes de emplearlos de método rutinario en los laboratorios de diagnóstico.

3.5.4. Extracción de ARN

Para aislar ARN de tejidos conservados en RNAlater, se extrae simplemente el tejido de la solución de RNAlater y se trata como si fuera un tejido fresco. La mayoría de los tejidos puede homogeneizarse directamente en tampón de lisis o de extracción.

3.5.5. Preparación de cortes finos para hibridación in-situ

Para hibridación in-situ (ISH), los tejidos se fijan en solución fijadora de Davidson durante aproximadamente 24 horas y después se incluyen en parafina según métodos estándar en histología. Se realizan cortes de 5 μm de grosor y se colocan en portas tratados con aminoalquilsilano, que se incuban después durante toda la noche en una estufa a 40ºC. Se elimina la parafina de los cortes mediante inmersión en xileno durante 10 minutos. Este paso se repite otra vez y luego se elimina el solvente por inmersión sucesiva en dos baños de alcohol absoluto, durante 10 minutos cada vez. Después, los cortes se rehidratan por inmersión en una serie de etanol. El protocolo puede exigir un paso de permeabilización de membrana para facilitar el acceso al ADN diana. Con este fin, los cortes se tratan a 37ºC durante 30 minutos con proteinasa K (100 μg/ml) en tampón TE (Tris [50 mM], EDTA [10 mM]). En pruebas de ISH resulta esencial teñir tanto un corte conocido positivo como un corte conocido negativo para eliminar resultados positivos falsos debidos a una tinción inespecífica, y resultados negativos falsos por errores en el protocolo de tinción.

Micosis en Peces

2014-01-19T10:55:00.002-08:00

Las enfermedades micóticas forman parte en ciertas enfermedades de los peces. Muchas veces los hongos se comportan como parásitos oportunistas ya que suelen afectar donde ya existen lesiones producidas por algunos mecanismos: manipulación, transporte, canibalismo, afecciones producidas por bacterias, afecciones producidas por protozoarios y metazoarios. Las enfermedades producidas por hongos en los peces son, en gran parte, producidas a nivel de tegumentario siendo aquella micosis de nivel de tegumento del orden saprolegniales.

Micosis Tegumentaria

Saprolegniasis

• Saprolegnia es una infección micótica de la piel y branquias este tipo de hongos se caracteriza por formar afecciones a manera de algodón en el cuerpo del pez formando un conjunto o colonias de hifas ramificadas denominados micelios. La temperatura juega un rol importante en el desarrollo pero la mayor parte de epizootias ocurre a bajas temperaturas.

• La prevención de esta enfermedad se logra manteniendo los peces bajo condiciones adecuadas de manejo esencialmente con una alimentación correcta y evitando hacinamientos manteniendo la densidad adecuada de cultivo.

Micosis Sistémica

Branquiomicosis

Es una enfermedad muy conocida por la podredumbre de las branquias, es muy frecuente en peces ornamentales, se caracteriza por formar necrosis a nivel de branquias ya que esto se debe al crecimiento intravascular de estos hongos. Los branquiomyces se localizan a nivel de branquias, específicamente en los vasos sanguíneos, causa dilatación de las laminillas branquiales y finalmente muerte por asfixia.

Tratamiento frente a Micosis

•NaCl --------------------------300-400gr/100 L

•FMC --------------------------1ml/100 l

•Nistatina----------------------500.000 U.I./100 l

•Ketoconazol------------------650mg/100 l

Cruzeiro - Cruzeiro do Sul: Hemiodus gracilis

2013-07-03T16:59:00.000-07:00

Orden: Characiformes

Nombre comun: Cruzeiro - Cruzeiro do Sul

Sinonimo: Hemiodopsis gracilis

Familia: Hemiodontidae

Distribución geográfica: Mato Grosso y Amazonas (Brasil) y Guayana).
Una especie similar (Hemiodus orthonops) se suele comercializar como H. gracilis. H. orthonops se localiza en las cuencas de los ríos Paraguay y Paraná desde Misiones, Corrientes y Formosa hasta Laguna La Cuarentena en Entre Ríos y Río Paraná medio en Santa Fe (Argentina).

Acuario: al menos de 150 litros compartiendo espacio con otros peces de su tamaño. Mucho espacio para nadar.
Agua: temperatura 24-27º C; pH 7 y dureza 10 dH
Decoración: plantas en la periferia, rocas y terrazas en la parte baja del acuario, rocas y troncos en la parte media.
Dimensiones: hasta 20 cm.
Hábitos: gregario, pacífico, ocupa las zonas medias e inferiores del acuario. Tolera peces de inferior tamaño, por lo que puede compartir el acuario con tetras grandes y otros Hemiodóntidos (Peces lápiz)
Dimorfismo sexual: sin información. Posiblemente alguna diferencia en el colorido de la aleta caudal y en la mayor robustez de la hembra, típica en esta familia.
Reproducción: sin antecedentes
Alimentación: omnívoro, aunque prefiere insectos y larvas de insectos; algas o lechuga deberían suministrarse periódicamente o alimento para peces a base de Spirulina o vegetales. No omitir alimento vivo regularmente.
Observación: La familia incluye peces de pequeño porte como Nannostomus que si bien pueden convivir con Hemiodus deben tener tamaño adulto.
En las ilustraciones que se encuentran al pie incluimos dos especies próximas muy parecidas a H. gracilis, las cuales en ocasiones se encuentran en el comercio. Ambas especies tienen exigencias y requerimientos similares a los demás miembros del Género, haciendo notar las diferencias de tamaño entre las diversas especies.

Anostomus: Anostomus anostomus

2013-07-01T19:46:00.001-07:00

Orden: Characiformes

Nombre comun: Anostomus

Familia: Anostomidae

Distribución geográfica: Desde Amazonia (Brasil, Colombia, Venezuela y Perú) hasta Guayana.

Tamaño: hasta 15 cm.

Acuario: Puede convivir con peces de tamaño similar en acuarios de 120 litros o más. Es un pez que necesita algas en su dieta, por lo que la buena iluminación será importante. Pese a ello, he comprobado que para reproducirse busca lugares penumbrosos y en el lugar más profundo del acuario.

Plantas: deben ser fuertes para evitar que las coma. Plantación abundante. Matas de Vallisneria, Saggitaria, Echinodorus, etc. Sobre ellas Anostomus encontrará pequeñas algas las cuales forman parte importante de su dieta.

Agua: 24 a 27º C; aunque no es muy exigente, prefiere pH 7 y dureza hasta 10º dH.

Decoración: Proveer escondites entre raíces, troncos y plantas largas.

Hábitos: Puede morder las colas de peces tranquilos por lo que no es recomendable ponerlos juntos en acuarios comunitarios. Este pez puede vivir en grupos con otros similares o mezclado con peces de otras especies, siempre que el acuario sea lo suficientemente grande y los peces convivientes de tamaño similar. Es bastante incompatible con los muy similares Leporinus sp. Por lo demás, es sociable y pacífico. Resulta conveniente mantenerlos en grupos de 6 o más individuos o de lo contrario solamente un par por acuario.

Dimorfismo sexual: la hembra es más robusta, con el vientre más abultado y en forma de "U" mientras que el macho muestra un vientre más delgado, ligeramente en forma de "V". En su estado adulto será bastante fácil identificar los ejemplares de uno y otro sexo si se los observa simultáneamente.

Reproducción: No hemos obtenido descendencia a pesar de haber presenciado varios desoves. Estos se lograron en primer lugar, en el acuario donde crecían varios A. anostomus, de los cuales dos de ellos, de tamaño aproximado a los 11 cm, se separaron del resto y pasaron a ocupar un espacio debajo de una mata de Vallisneria spiralis muy cerca del fondo del acuario. En el lugar un conjunto de piedras de diferente tamaño formaban "cuevas" de las cuales entraban y salían lo que resultó ser una pareja. El acuario no contaba con luz artificial pero recibía buena iluminación natural.

Al atardecer, casi al crepúsculo, en una de las tantas entradas y salidas de las cuevas, la pareja se ubicó una al lado de otra vibrando el cuerpo del macho con mucha intensidad. Previo a este momento había observado cómo el macho se cruzaba delante de la hembra formando un semicírculo y retrocedía varias veces, hasta que ambos giraron apuntando hacia las "cuevas" y en la base de las plantas el macho volvía a ponerse al costado de la hembra con nuevas vibraciones separadas entre si por un par de segundos.

Cada embate del macho que al vibrar tocaba el flanco derecho de la hembra, producía la evacuación de unos pocos huevos de aproximadamente 1,5 mm que caían entre las plantas.

Mientras el macho se esforzaba por mantener alejados a otros peces del lugar, la hembra se comía alguno de los huevos. En un primer momento pensé que podría ser una estrategia para trasladar los huevos a un lugar más seguro, pero no fue así.

Trasladada esa pareja a un acuario propio, desovaron de forma similar en un par de ocasiones, con iguales resultados negativos.

Alimentación: prefieren alimento vivo y algas, pero en su dieta es posible incluir cualquier alimento para peces. Incorporar lechuga y algas en la dieta para evitar que se coma las plantas.

Observación: Cuerpo en forma de torpedo. El mantenimiento en acuarios es relativamente fácil. Suele ser beneficiosa una corriente de agua bastante enérgica unas cuantas horas al día.

Observaciones: se diferencia de Anostomus ternetzi por las terminaciones aserradas de sus líneas oscuras.

Green Terror: Aequidens rivulatus

2013-06-25T18:09:00.002-07:00

Orden: Perciformes

Nombre común: Green Terror - Terror verde (Aequidens rivulatus)

Familia: Cichlidae (Cíclidos)

Descripción de la Familia: Cichlidae (Ciclidos) - Bonaparte, 1840

Subfamilia: Cichlasomatinae

Descripción del Genero: Aequidens - (Eigenmann y Bray, 1894).

Distribución geográfica: Panamá, Colombia, Ecuador y Perú

Tamaño: hasta 20 cm

Acuario: mínimo 120 litros, específico o con cíclidos de igual tamaño y temperamento.

Agua: pH 6,8 a 7,5; dH hasta 20º; Temperatura: 20 a 25º C

Decoración: típica para acuario de grandes cíclidos, con rocas, troncos y filtro externo.

Hábitos: territorial. Excavador, de modo que resulta inútil el filtro de placas.

Dimorfismo sexual: típica de los cíclidos; macho más colorido, aletas dorsal y anal terminadas en punta. Cabeza y lomo más prominente que el de la hembra.

Reproducción: desovadores sobre sustrato. Cuidan el desove y las crías.

Alimentación: abundante y variada. Alimentos vivos, carne en trocitos, corazón vacuno, pescado. También aceptan alimentos para peces.

Ácara azul: Aequindes pulcher

2013-06-25T17:51:00.002-07:00

ÁCARA AZUL (AEQUIDENS PULCHER)

Orden: Perciformes

Nombre comun: Ácara azul / Blue Ácara

Sinonimo: Andinoacara pulcher

Familia: Cichlidae (Cíclidos)

Descripción de la Familia: Cichlidae (Ciclidos) - Bonaparte, 1840

Subfamilia: Cichlasomatinae

Distribución geográfica: Colombia, Venezuela, Trinidad y Panamá.

Tamaño: machos hasta 13 cm.

Acuario: comunitario con cíclidos pacíficos de porte medio a chico, Caracínidos de tamaño grande, Corydoras y otros peces similares. Plantas Echinodorus, Vallisnerias, Egeria (Elodeas), Anubias,Sagittarias y otras tropicales en lo posible resistentes.

Agua: sin mayores exigencias, preferentemente pH 7 y dureza de media a baja; temperatura: 24 a 27ºC

Decoración: cuevas y escondites, espacio libre para natación.

Hábitos: Pacífico con peces de tamaño similar. Territorial en el período de celo, reproducción y cuidado de las crías. Es recomendable mantener esta especie en parejas o más de una hembra por macho.

Dimorfismo sexual: Macho, aletas puntiagudas y mayor colorido (fotos 3 y 4) Las hembras son menos coloridas y con las aletas dorsal y ventral más cortas.

Reproducción: típica de los cíclidos; el macho cuida el desove.

Alimentación: prefiere alimentos vivos o liofilizados pero acepta todo tipo de alimentos para peces.

Red Parrot: Cichlasoma sp

2013-01-25T08:57:00.001-08:00

Nombre común: Pez loro, Perico.
Nombre científico: Cichlasoma sp. "Red Parrot".

Clasificación:
• Orden: Perciformes.
• Familia: Cichlidae.
• Subfamilia: No tiene.

Biotopo:
No se encuentra en la naturaleza.

Distribución:
Procede de la cría selectiva.

Esperanza de vida: Entre 5-10años.

Forma:
La forma de este pez consiste en su deformidad, columna vertebral torcida, boca que no puede cerrar, opérculos branquiales que no tapan las branquias dejándolas expuestas a todo tipo de parásitos, ojos que no son completamente redondos.

Coloración:
El color base del cuerpo es naranja o rojo, el hombre a base de hormonas y tintes a conseguido sacar coloraciones de lo mas diversas.

Tamaño: Máximo 30cm.

Diferencias sexuales:
En época de reproducción se observara la papila genital del macho fina y larga, en la hembra mas corta y gruesa.

Acuario: A partir de 100 litros para una pareja.

Temperatura: Entre 23ºC - 26ºC.

Agua: pH entre 7-8, GH entre 10º – 20º dGH.

Decoración:
A base de rocas, piedras o vasijas formando refugios y escondites, el sustrato sera de granulometría pequeña.

Alimentación:
Aceptara todo tipo de alimentos comerciales, vivo, congelado y papillas.

Comportamiento:
Se trata de un pez territorial pero muy pacifico con el resto de habitantes de acuario.

Reproducción:
Es frecuente que estos ciclidos se emparejen y hagan puestas, pero los huevos se echan a perder por que los macho son estériles. Las hembras si son fértiles pudiendo cruzarlas con machos de cualquier especie de cichalsoma o machos de Amphilophus citrinellus.

Observaciones:
Los ejemplares que se ven en las tiendas provienen del cruce de de machos A. citrinellus (Midas) con hembras de Paratheraps synspila.

Flowerhorn: Cichlasoma Sp.

2013-01-25T08:47:00.002-08:00

Nombre común: Flowerhorn
Nombre científico: Cichlasoma Sp. "Flowerhorn".

Clasificación:
• Orden: Perciformes.
• Familia: Cichlidae.
• Subfamilia: Cichlasomatinae.

Biotopo:
No se encuentra en la naturaleza.

Distribución:
Procede de la cría selectiva.

Esperanza de vida: Sin datos.

Forma:
A simple vista es muy parecido al ciclido midas (A. citrinellus), cuerpo robusto, alto y ancho. Los machos adultos presenta una giba en su cabeza.

Coloración:
Tienen una amplia variedad de colores por la cantidad de especies que están implicadas en los cruces, los hay con tonalidad base en rojo, rosa, naranja, verde azulado, perlados, etc....

Tamaño: 30cm.

Diferencias sexuales:
Los machos son mas grandes que las hembras, sus aletas están mas desarrolladas, terminadas en punta y se les desarrolla la giba en la cabeza de la que las hembras carecen.

Acuario: A partir de 250 litros para una pareja.

Temperatura: Entre 24ºC y 30ºC.

Agua: pH: Entre 7.0 y 8.0,GH: Entre 8 y 20º dGH.

Decoración:
A base de piedras planas y troncos grandes pero siempre dejando espacio para nadar.

Alimentación:
Omnivoro, acepta cualquier tipo de alimento, congelado, vivo, comercial, etc...

Comportamiento:
Muy agresivos, solo para ser mantenido en un acuario especifico o en pareja, contando que si la hembra no esta dispuesta para la cría el macho la puede matar.

Reproducción:
Los huevos son depositados en una superficie plana y preferentemente vertical. La puesta rondará los 1.000 huevos y la hembra cuidará de ellos en tanto que el macho vigilará el territorio.

La puesta eclosionará a partir de las 72 horas siguientes al desove y serán llevados a un gran hoyo que cavarán sus padres. Al cabo de otros cinco días nadarán libremente, habrán consumido su saco vitelino y será la hora de proveerles de alimento vivo, los alevines son robustos y crecerán rápidamente.

Observaciones:
En época de cría hay que observar siempre al macho porque podría matar a la hembra (por ejemplo si la hembra no está lista para desovar), por lo que es muy recomendable tener un segundo acuario para poder separarles.

Blue Dempsey: Cichlasoma sp.

2013-01-25T08:41:00.003-08:00

Nombre común: Blue Dempsey.

Nombre científico: Cichlasoma sp. "Blue Dempsey".

Clasificación:

• Orden: Perciformes.
• Familia: Cichlidae.
• Subfamilia: Cichlasomatinae.

Biotopo:

No se encuentra en la naturaleza.

Distribución:

Procede de la cría selectiva.

Esperanza de vida: Sin datos.

Forma:

Cuerpo ovalado y comprimido lateralmente, con las aletas dorsal y anal muy largas y terminadas en punta, sobre todo en los machos.

Coloración:

El color base del cuerpo es azul metálico, con puntos de color azul oscuro en el cuerpo y sobre las aletas. El color de la cara es de un azul mas claro.

Tamaño: Machos 25cm, hembras 20cm.

Diferencias sexuales:

Los machos son mas grandes que las hembras, estos poseen las aletas dorsal y anal mas desarrolladas y terminadas en punta. En las hembras son redondeadas.

Acuario: A partir de 200 litros.

Temperatura: Entre 25ºC - 28ºC.

Agua: pH de 7-8, GH inferior a los 15º dGH.

Decoración:

A base de rocas bien fijadas para que no puedan moverlas y una luz tenue. La vegetación sera respetada ya que no se trata de peces excavadores.

Alimentación:

Aceptara todo tipo de alimentos comerciales, vivo, congelado y papillas.

Comportamiento:

A diferencia del Jack Dempsey que es muy agresivo, este es muy pacifico y respetara al resto de habitantes.

Reproducción:

Muy difícil al ser un híbrido, se cree que en la mutación han perdido gran parte de la fertilidad de ambos sexos.

Una vez que se hayan emparejado limpian una zona del acuario y alejan a cualquier intruso.

La hembra deposita los huevos en una piedra lisa y el macho los fecunda. A las 72 horas eclosionan los huevos, unos días mas tarde los alevines comenzaran a nadar libremente, teniendo que suministrarles artemia salina recién eclosionada.

Tetra borracho, Tetra hocico rojo, Borrachito: Hemigrammus Rhodostomus

2013-01-04T20:00:00.002-08:00

Nombre común: Borrachito, Tetra borracho, Tetra hocico rojo.

Nombre científico: Hemigrammus Rhodostomus.

Orden: Characiformes.
Familia: Characidae.
Subfamilia: Tetragonopterinae.

Biotopo:

Zonas de aguas oscuras, con abundante vegetación y con escasa o nula corriente.

Distribución:

Cuenca del río Orinoco, bajo Amazonas, rio Negro y Vaupes.

Esperanza de vida: 3-4 años.

Forma:

Cuerpo cilíndrico y alargado, ligeramente comprimido lateralmente. Presenta la aleta adiposa de la familia.

Coloración:

Cuerpo totalmente plateado, con reflejos que pueden ir desde el verde al amarillo. La aleta caudal, presenta unas "barras" negras y blancas alternadas. El resto de las aletas es transparente. Pero su principal característica, es el inteso color rojo de su cabeza.

Tamaño: 4-5 centímetros.

Diferencias sexuales:

Hebras de mayor tamaño y con colores más apagados que los machos.

Acuario:

Acuarios de medianos a grandes, no los recomendaría para acuarios inferiores a 80 litros (ya que gustan de estar en grupo y tener mucho sitio para nadar). Acuarios con luz tamizada por plantas flotantes y poca corriente.

Temperatura: 24-28ºC.

Agua: PH ligeramente ácido (5-6,8), y agua de blanda a semidura (4-10dGH).

Decoración:

Acuario con plantas altas al fondo y los laterales, con plantas bajas por la zona central (para dejar amplia zona de nado), plantas flotantes para difuminar la luz. El resto, se puede completar con troncos y rocas.

Alimentación:

Es omnivoro. Acepta comida en escamas, liofilizada, congelada y viva. La dieta ha de ser lo más variada posible.

Comportamiento:

Pez pacífico y tranquilo, de cardumen, por lo que ha de estar en grupos grandes (al menos 12 ejemplares, si son más mejor). Pez ideal para acuarios comunitarios, con otros de caracteristicas similares.

Reproducción: Muy difícil.

Prepararemos un acuario de la siguiente forma:

-Agua a una temperatura de 26ºC, un Ph de 6 y blanda.

-En fondo pondremos unas canicas, musgo de Java, o una redecilla.

- Pondremos plantas flotantes.

En este acuario pondremos a 2-3 hembras y un macho, durante unos días los alimentaremos con alimento vivo o en su defecto con alimento congelado. Una vez realizada la puesta retiraremos a los adultos. Dejar el acuario completamente a oscuras hasta la eclosión de los huevos, la cual se produce a las 36-48 horas.

Observaciones:

Pez muy adecuado para ocupar la zona media-baja del acuario. Es uno de los pocos peces de cardumen, que se comportan como tal en el acuario, se mueven siempre juntos.

Pez bastante sensible al transporte, el cual hemos de realizar lo más rápido y menos bruscamente posible. Una vez aclimatado al acuario, es un pez resistente.

Tetra Rayos X, Pez colorin: Pristella Maxillaris

2013-01-04T19:54:00.004-08:00

Nombre común: Tetra Rayos X, Pez colorin.

Nombre científico: Pristella Maxillaris.
Orden: Characiformes.

Familia: Characidae.

Subfamilia: Cheirodontinae

Biotopo:

Rios, arroyos y lagunas de aguas claras, tranquilas y con abundante vegetación.

Distribución:

Principalmente por la zona norte de Sudamerica, Guayana, Suriname, Guayana Francesa y Venezuela. Aunque también esta presente en el curso inferior del Amazonas.

Esperanza de vida:

4-5 años.

Forma:

Presenta un cuerpo de foma romboidal (más alto en las Hembras), alargado y comprimido lateralmente. Presenta la aleta adiposa típica de la familia.

Coloración:

El cuerpo es totalmente traslucido, unicamente presenta una pequeña manchita negra tras las branquias. La zona en la que se encuentras los organos vitales, parece estar recubierta por una membrana plateada. Tanto la aleta dorsal como la anal, presentan tres bandas horizontales con la siguiente coloracion (partiendo de cuerpo hacia el exterior): amarilla, negra y blanca. Las aletas ventrales presentan unas manchas negras. La aleta caudal, aunque transparente, es de un color marrón-rojizo.

Tamaño:

4-5 centímetros.

Diferencias sexuales:

Macho más bajo y alargado que la hembra, así mismo es color de la cola es algo más vivo en el macho.

Acuario:

Acuarios de pequeños a grandes, a partir de 60 litros, con luz tenue, fondo oscuro y poca corriente.

Temperatura:

23-27ºC, aunque soportan temperturas algo más elevadas.

Agua:

PH entre 6 y 8. Dureza entre 5 y 15ºdGH.

Decoración:

Plantas altas y frondosas en el fondo y los laterales, con plantas flotantes para tamizar algo la luz. Para la zona central, plantas más bajas, troncos y rocas. Dejar bastante sitio libre para que puedan nadar.

Alimentación:

Pez omnivoro, que aceptará con agrado cualquier tipo de alimento comercial, liofilizado, congelado y vivo. La dieta ha de ser lo más variada posible.

Comportamiento:

Pez de cardumen, por lo cual hemos de mantenerlo en grupos de al menos 10-12 ejemplares. Pez tranquilo y pacífico, ideal para acuarios comunitarios con otros peces de características similares.

Reproducción:

Dificil. Prepararemos un acuario pequeño (30-40 litros), en el que pondremos alguna planta flotante, plantas densas y de hoja fina (Cola de Zorro, Ambulia, Cabomba), en el fondo podemos poner Musgo de Java, o piedras pequeñas y redondeadas. La temperatura ha de ser de 24ºC y e PH de 6-6,5. En este acuario pondremos a un macho y dos hembras, a los cuales proporcionaremos alimento vivo, o congelado. Una vez realizada la puesta, retiramos a los padres y tapamos el acuario, hasta el momento de la eclosión de los huevos, la cual se produce a las 36-48 horas. El acuario se tapa para que no le de la luz; ya que los huevos son muy propensos a coger hongos y de esta forma ayudamos a evitarlo.

Observaciones:

Es un pez que se moverá principalmente por la zon media del acuario.

Fuente: http://www.portalpez.com

Pez hacha mármol, pechudito: Carnegiella Strigata

2013-01-04T19:31:00.002-08:00

Nombre común: Pez hacha mármol, pechudito.

Nombre científico: Carnegiella Strigata.

Orden: Characiformes.
Familia: Gasteropelecidae.

Biotopo:
En cauces de ríos y arroyos de aguas lentas, lagunas y charcas, en los que exista abundante vegetación y poca corriente.

Distribución:
Muy extendido, casi en toda Sudamérica. Esta presente en casi todos los afluentes del Amazonas.

Forma:
Esta es la cualidad más llamativa de este pez. La zona dorsal es completamente plana, mientras que la zona abdominal presenta una curva muy marcada al principio, para después ir subiendo más suavemente hacia la caudal. Presenta una aletas pectorales extremadamente largas, gracias a las cuales puede saltar fuera del agua y realizar pequeños planeos de varios metros de longitud.

Coloración:
Esta especie puede presentar dos coloraciones fundamentales, una sobre fondo plateado y otra sobre fondo ocre-marrón. En ambos casos esta presente una linea oscura que va desde cerca del ojo, hasta la base de la aleta caudal. Hacia esta linea, parte desde el abdomen unas bandas transversales, más o menos largas y gruesas, de color marrón oscuro- negro.

Tamaño:
3 - 4 centímetros.

Diferencias sexuales:
Las hembras presentan un abdomen de mayor tamaño.

Acuario:
Acuarios de pequeños a grandes. A partir de 60 litros es suficiente para un pequeño cardumen. Acuarios tapados, con luz suave y poca corriente.

Temperatura: 24 - 29ºC.

Agua:
Debido a su gran distribución, las condiciones pueden ser variables. Ph de ligeramente ácido a neutro (5,5 a 7) y la dureza de blanda a ligeramente dura ( GH: de 5 a 12 dGH).

Decoración:
Acuario abundantemente plantados por la zona trasera y los laterales, con abundates plantas flotantes que suavicen la luz. El resto de la decoración puede estar compuesta por troncos y rocas.

Alimentación:
Hay que tener en cuenta que es un pez que solamente comerá en la superficie, no bajará a buscar la comida que cae al fondo. Se trata de un pez omnivoro, que acepta perfectamente escamas, comida congelada, liofilizado y viva.

Comportamiento:
Se trata de un pez de cardumen, por lo que no es conveniente tenerlo en grupos inferiores a 10-12 ejemplares, si son más mucho mejor. Es un pez ideal para acuarios comunitarios, con otros peces de caracter tranquilo y tamaño similar. Ocupa únicamente la zona superior del acuario, rozando la superficie del agua. Es muy propenso a saltar fuera del acuario, si se siente amenzado, o se asusta.

Reproducción:
Desconozco aspectos de este apartado, pero creo que no se conseguido en cautividad (por lo menos en los que a nivel aficionado se refiere), o cuando menos es extremadamente complicada.

Observaciones:
Pez muy asustadizo y propenso a saltar fuera del acuario, por lo que hemos de tenerlo siempre tapado. Les gustan mucho las aguas marrones, que producen los taninos de los troncos al introducirlos en los acuarios.

Piraña roja: Serrasalmus Nattereri

2012-10-11T21:15:00.001-07:00

Nombre común: Piraña roja.

Nombre científico: Serrasalmus Nattereri, Pygocentrus nattereri.

Clasificación:

• Orden: Characiformes (caraciformes).

• Familia: Characidae (Carácidos).

• Subfamilia: serrasalmus.

Biotopo:

Vive en ríos y lagunas de agua dulce, gustan de los refugios que proporcionan las marañas de raíces retorcidas y abundante vegetación.

Distribución:

Ríos y lagunas latinoamericanas, más presente en el Amazonas y sus afluentes.

Esperanza de vida:

Lo más habitual es entre 3 y 4 años pero hay quien habla de hasta 20 años si se la mantiene en unas condiciones óptimas.

Forma:

Son peces ovalados con una gruesa cabeza dotada de una poderosa mandíbula con dientes triangulados muy afilados que usan para triturar la carne de sus presas. Las aletas pectorales y pélvicas están poco desarrolladas, pero la caudal y anal son mas grandes.

Coloración:

Cuerpo cubierto de escamas en los laterales con un color grisáceo recubierto como de purpurina en los contrastes de luz y, como su nombre común indica, desde la mandíbula hasta la aleta anal desarrolla un color rojo más intenso según el estado en el que se encuentre.

Tamaño:

Alcanza 30 cm en su medio natural pero en cautividad es algo menor.

Diferencias sexuales:

El dimorfismo sexual no esta muy marcado, creo que en las hembras su cabeza es menos gruesa que en los machos y un tamaño algo menor.

Acuario:

300 litros en adelante.

Temperatura:

Entre 24 y 27ºC.

Agua:

La composición del agua es poco importante.

Decoración:

Necesita de una vegetación abundante con plantas que asemejen a las marañas de raíces o raíces de manglar y muy necesarias también serían plantas flotantes o vallisneria gigantea para frenar la abundancia de luz.

Alimentación:

Es bastante amplia en su medio natural como por ejemplo peces , anfibios, grandes insectos incluso pequeños mamíferos a los que devoran en minutos. El cautividad pueden ser alimentadas si las mantienes desde pequeñas con piensos, peces, carne cruda, salchichas, mejillones congelados etc. Sino están bien alimentadas se comerán a algún congénere de su misma especie.

Comportamiento:

Son peces de cardumen y se recomienda por lo menos un grupito de cuatro o cinco mínimo para que se encuentren bien en el acuario. Aún estando acompañada de muy mala reputación, por las películas de terror principalmente, son peces tímidos que necesitan de estar en grupo para estar tranquilos y sus ataques hacia animales más grandes o incluso personas sólo es debido a que esté herido ya que el olor de la sangre las agita muchísimo y hace que ataquen en busca de comida.

Reproducción:

Se ha producido en cautividad en muy contadas ocasiones y se han llegado a registrar puestas de entre 1.000 y 5.000 huevos

Observaciones:

Para criarlas en cautividad se necesita de un sistema de filtración muy potente y es recomendable filtración de suelo pues en su forma de comer desperdician mucho alimento que nos causará problemas con los niveles del agua de no ser así.

Hyphessobrycon pyrrhonotus

2012-10-11T21:08:00.003-07:00

Nombre común: Carece de nombre común.

Nombre científico: Hyphessobrycon pyrrhonotus (Burgess , 1993)

Clasificación:

• Orden: Characiformes.

• Familia: Characidae (Carácidos)

Biotopo:

Aguas tranquilas del Río Negro

Distribución:

Río Negro - Brasil

Forma:

La forma es la típica de los carácidos, con cuerpo ancho y comprimido lateralmente con forma esférica.

Coloración:

El cuerpo es de una coloración rosácea con una mancha rojo intenso en los laterales, típica del corazón sangrante. Esta especie se diferencia porque tiene una franja de color rosáceo intenso que le va desde el ojo hasta el pedúnculo caudal (lomo).

Tamaño:

Hasta 7 cm. Las hembras un poco menos.

Diferencias sexuales:

Los machos: cuando llegan a la edad adulta se caracterizan por tener la aleta dorsal muy desarrollada, llegando incluso hasta la aleta caudal. La coloración de la aleta dorsal, en la base tiene un color blanquecino, el resto es de color negro con las puntas del mismo color que la base. También se caracterizan por tener la aleta anal muy desarrollada en forma de gancho, la coloración es blanca.

Las hembras: son menos voluminosas que los machos. La aleta dorsal no se les desarrolla como los machos. La tienen más pequeña y redondeada. La coloración de la aleta dorsal es la misma que los machos. La aleta anal no la tienen tan desarrollada como los machos pero también termina en forma de gancho y la coloración es blanca

Temperatura:

De 24 a 27 ºC

Agua:

pH: 6 a 7; GH: 6-10 d

Acuario:

Se requiere un acuario partir de 100 L, bien plantado con espacios libres para nadar.

Alimentación:

Omnívoro. Aceptan todo tipo de comida, alimento en escamas, liofilizado, vivo o congelado como la artemia, daphnia, larvas, etc.

Comportamiento:

Apto para acuarios comunitarios. Es un pez de carácter pacífico, gregario que vive en cardúmen ( no menos de 8/10 ejemplares con más cantidad de hembras que de machos), aunque el tamaño es mucho mayor que otros tetras más pequeños como el tetra neón o el tetra cardenal, conviven juntos sin ningún problema. Su zona de nado es la zona media-baja del acuario

Esperanza de vida:

Superior a cuatro años.

Reproducción:

No se ha descrito su reproducción en cautividad.

En época de fresa, en los machos se les intensifican los colores, llegando a ser espectaculares. Inician una danza de exhibición sobre los otros machos exponiendo todo su esplendor y colorido.

Nota: De esta especie de Hyphessobrycon se conocen tres especies muy parecidas y fácilmente confundibles. El H. socolofi es más fácil de identificar ya que es más pequeño, la aleta anal es rosácea al igual que la aleta dorsal que es más pequeña y redondeada y acaba con coloración rosa intenso. El H. erythrostigma y el H. pyrrhonotus son más fáciles de confundir pero el pyrrhonotus tiene una franja rosácea intensa en todo el lomo cosa que el erythrostigma no tiene. La aleta dorsal del pyrrhonotus es más alargada.

Gurami besador, besucón: Helostoma temminckii

2012-10-07T19:35:00.003-07:00

Nombre Científico: Helostoma temminckii

• Orden: Perciformes.

• Suborden:Anabantoidei.

• Familia: Helostomatidae.

Biotopo:

Acumulaciones de aguas estancadas como charcas poco profundas, pantanos o lagos inactivos, siempre con gran cantidad de plantas y restos vegetales en estado de putrefacción donde se crían los infusiorios y el nanoplacton necesarios como complemento para su alimentación, especialmente de los alevines.

Distribución:

Tailandia, Java, Sumatra, Borneo y Malasia.

Forma:

Oval comprimido lateralmente, labios grandes y flexibles que asemejan una boca humana, tanto la aleta dorsal como la anal se prolongan hasta el pedúnculo caudal. Posee dientes de tipo cuchara que varían con la edad.

Coloración:

La variedad salvaje tiene un color amarillo-verdoso suave sin embargo la que encontramos en el comercio es rosada o plateada, siendo la plateada menos común.

Tamaño:

Hasta 30cm. Hemos de tener en cuenta que aunque el pez joven es mas bien alargado en su edad adulta es más redondeado y grueso, no tan comprimido lateralmente.

Diferencias sexuales:

Como en la mayoría de los laberíntidos hemos de fijarnos en su aleta dorsal y en su vientre. La aleta del macho termina en punta con los radios ramificados mientras en la hembra se mantiene redondeada y el vientre ligeramente más abultado.

Acuario:

Al ser un pez de buen tamaño debemos mantenerlo en acuarios de al menos 100l. bien plantados, con piedrecillas y grava gruesa ya que sino remueven el fondo. Agradecen las pequeñas algas que se crían en los cristales o plantas con lo que no es conveniente que las limpiemos habitualmente, sino también puede comerse alguna de nuestras plantas a excepción del helecho o el musgo de java.

Temperatura:

Entre 22 y 28º aumentando hasta 30º para la reproducción.

Agua:

PH entre 6,8 y 8,5 admiten cualquier tipo de dureza hasta 30º.

Alimentación:

A pesar de ser considerados omnívoros y de alimentarles con escamas estos peces necesitan un gran aporte vegetal en su dieta, sino morirán de hambre en nuestros acuarios. Son capaces de alimentarse de algas, manoplacton (que filtran a través de sus branquias), escamas, comida viva, etc… pero no debemos olvidar añadir lechuga, espinacas, guisantes o cualquier otro tipo de verdura en su dieta si nuestro acuario no produce suficientes algas.

Comportamiento:

Son peces sumamente pacíficos que pasan gran parte del día “besando” las plantas, los cristales, troncos y demás componentes del acuario en busca de comida.

En ocasiones los machos se enzarzan en peleas que consisten en sujetarse mutuamente por los labios hasta que uno de los dos cede.

Reproducción:

A pesar de ser sumamente difícil para el aficionado se puede intentar utilizando agua ligeramente ácida, poniendo matas de plantas flotantes o bien hojas de lechuga, temperatura de unos 28-30º y por parejas.

Caso de surgir el desove esto ocurrirá en la parte baja del acuario y debemos retirar lo antes posible a la pareja, ya que sino se comerán la puesta.

El macho en este caso no construye nido de burbujas, sino que los huevos ascienden a la superficie donde se quedan flotando o bien se pegan a las hojas hasta que unas 50 horas mas tarde nacen los alevines, 5 días mas tarde han consumido el saco vitelino con lo que debemos alimentarlos exactamente igual que a cualquier alevín de ese tamaño.

A partir de los 15cm se consideran sexualmente maduros.

Observaciones:

En su zona de origen se consideran peces aptos para la alimentación humana, con lo que han sido introducidos en otros países para ser usados como alimento.

Pez hoja, Pez hoja amazónico: Monocirrhus polyacanthus

2012-10-03T21:13:00.001-07:00

Nombre Cientifico: Monocirrhus polyacanthus
Nombre C. en desuso: Monocirrhus mimophyllus.

Clasificación:
• Orden: Perciformes
• Familia: Polycentridae. (peces hoja).

Biotopo: Amazónico. Ríos de curso lento y aguas quietas.

Distribución:

Amazonas, con una distribución amplia por toda la cuenca. Brasil (curso principal del Amazonas y ríos Manacapuru, Solimoes, Tapajós, Negro, etc.) Guayana (río Essequibo), Bolivia (Arroyo Grande); Colombia (Amazonas y afluentes), Perú (ríos Manite, Ampiyacu, Amazonas y afluentes) Venezuela (río Platanilla).

Esperanza de vida: 3 años.

Forma:

Forma alta, ovoidal; cabeza muy puntiaguda con boca protráctil; el labio inferior dispone de un corto barbillón filiforme eréctil mimetiza perfectamente con hojas caidas de arbustos.

Coloración:

Dependiendo del estado emocional del pez puede adoptar la coloración de una hoja muerta parda naranja o amarrilla con algunos moteados negros o blancos, conserva una pequeña linea central que recuerdan los nervios de la hoja en sus hojos y alrrededor de ellos manifiesta tambien dicha linea.

Tamaño: Unos 8 centimetros

Diferencias sexuales:

Muy difícil diferenciar en la región anal se aprecian diferencias de forma abrupta para los machos y mas curva en las hembras.

Acuario: De 80 a 100 Litros

Temperatura: De 24 28º C

Agua:

PH entre 5.0 y 6.0. Dureza, 3-6ºdGH

Decoración:

Abundante en Plantas preferiblemente de hojas grandes y troncos.

Alimentación:

En cantidad el Pez Hoja requiere alcanzar la medida de su peso en comida y ya que es una especie exclusivamente piscívora en comunitarios sería un gran desastre, acepta otras presas vivas como larvas, artemia, sin embargo también puede alimentarse con mejillones huevas de pescado hasta con alimentos en gránulos o escamas el cual probaran ocasionalmente.

Comportamiento:

A pesar de ser un depredador y poseer buenas técnicas de caza (camuflado se mimetiza con las hojas del entorno y espera el paso de sus presas para capturarlas), posee un comportamiento tranquilo el cual el acuarista no debe confiar al mezclar con otros peces su boca es grande con relación a su cuerpo y ve como presas a guppys, platys, xipho adultos con facilidad o cualquier otra presa que no supere el 80% de su cuerpo.

Reproducción:

Es posible en acuarios, la hembre desova en hojas o superficies planas y lisas que se encargan de limpiar, hasta 300 huevos pueden desovar y luego el macho cuidara celosamente hasta de la hembra, la que habra que poner en otro acuario, una vez eclosionados (de 3 a 4 dias) los alevines pueden alimentarse con infusorios o nauplios de artemia, es de esperarse el canibalismo en esta etapa si llegan a desarrollarse unos mas que otros.

Pez globo ocelado: Tetraodon biocellatus

2012-09-19T19:42:00.001-07:00

Familia: Tetraodóntidos (TETRAODONTIDAE)

Orden Tetraodontiformes (Peces globos)

El Tetraodon biocellatus es una de las pocas especies de peces globo, con habilidad para poder aumentar de tamaño ante cualquier amenazada, adaptada al agua dulce preferiblemente neutra y blanda.

Sus dos pares de dientes y su gusto por los caracoles lo convierten en una especie muy recomendable para dar por terminada cualquier plaga de caracoles en el acuario. Sin embargo mantenido en acuarios con poca vegetación y refugios harán que esta especie se muestre algo intolerante con otros peces del acuario comunitario.

Su coloración y forma son muy llamativas. Los animales jóvenes, adecuados para el acuario comunitario, muestran un vientre de coloración blanca. En los adultos es de color parda. En ambos casos su librea es en tonalidades verdes oscuras y amarillas jalonadas por manchas ribeteadas de amarillo. Puede alcanzar una longevidad de 5 años.

Tamaño
Entre los 6 y los 8 cm.

Hábitat
Asia. Presente en ríos y lagos de India, Tailandia, Sumatra y Borneo.

Longitud del acuario

No es un factor determinante en su mantenimiento, a partir de los 50 litros para un ejemplar.

Condiciones del agua

Especie exclusivamente de agua dulce. Aguas ligeramente ácidas a neutras, blandas a moderadamente duras.
Temperatura

Entre los 22 y los 28º C.

Mantenimiento
El acuario para el mantenimiento de peces globo deberá repartir a partes iguales zonas libres para la natación y zonas densamente pobladas que den seguridad al animal. La iluminación podrá ser intensa para beneficiar el desarrollo de las plantas siempre que dispongamos como hemos comentado de zonas oscuras para que pueda ocultarse. No es dañino con la vegetación.

Alimentación
Es un excelente controlador biológico de plagas de caracoles de los cuales se alimenta. Un solo ejemplar es capaz de limpiar un acuario en poco más de 24 horas. Las conchas de los caracoles le sirven para controlar el crecimiento de sus dos pares de dientes. A falta de caracoles su alimentación estará compuesta por alimentos congelados tales como artemia, tubifex o larvas de mosquito. Su mantenimiento con invertebrados acuáticos tales como camarones o caracoles manzana están totalmente desaconsejados. Difícilmente y con el tiempo puede alimentarse también de hojuelas.

Diferencias entre sexos

Imposible de determinar. Si podemos determinar con precisión la edad de los animales podemos llegar a clasificar a los animales más grandes como hembras.

Asociación

Su mantenimiento en acuarios comunitarios debe ser siempre con animales jóvenes. Mantener más de uno en el acuario permite que las peleas se produzcan entre ellos e ignoren al resto de compañeros de tanque. Los acuarios densamente plantados ayudan a su comportamiento pacífico. Con el paso del tiempo el animal se puede mostrar más agresivo.

Reproducción
No existe constancia de su reproducción en acuarios domésticos.

Grado de dificultad: principiante, avanzado, experimentado

Aficionado avanzado

Coridora bronceada: Corydoras aeneus

2012-09-19T19:33:00.000-07:00

Familia Calíctidos (CALLICHTHYIDAE)

Orden Siluriformes (Siluros y Coridoras)

Especie de siluro de las más corrientes en los acuarios domésticos, debido a su fácil mantenimiento y a que es una oferta habitual de los comercios.

Pez muy apropiado para el acuario comunitario del principiante de formas redondeadas y dorso arqueado.

También es utilizado como pez escuela en la cría de determinadas especies de peces territoriales debido a su blindaje natural, compuesto por placas óseas que lo vuelven muy resistente.

Presenta dos pares de barbillones alargados con los que rastrea el alimento disperso por el sustrato.

Deberemos tener cuidado de no colocar un sustrato de cantos afilados para no dañarlo. También debemos prestar atención al manipularlo puesto que su aleta dorsal está formada por radios muy afilados.

Debido a su interesante comportamiento respiratorio, al igual que el resto de corydoras, resulta muy ventajoso su mantenimiento. Las Corydoras pueden absorber el oxígeno a través de sus intestinos por lo que es corriente verlas subir a la superficie. Este acto resulta un buen indicador de los niveles de oxígeno del tanque y de la necesidad de cambio de agua. El en comercio podemos encontrar multitud de variedades cromáticas siendo destacable la variedad albina de ojos rojos, que sin duda es la Corydora albina más común.

Tamaño
Hasta 7 cm.

Hábitat
Sudamérica, Trinidad. Venezuela hasta el río de La Plata.

Longitud del acuario

No requiere de ser mantenido en tanques muy voluminosos. 45 cm.

Condiciones del agua

Ph neutra tirando a ácida, Entre 6 y 7,5º. Aguas blandas a moderadamente duras.

Temperatura
Entre 20 y 26º C.

Mantenimiento
Mantener en grupo de al menos 4 individuos. El sustrato del tanque habrá de estar compuesto por grava fina o arena y evitaremos introducir rocas o objetos cortantes que puedan dañarlo en su deambular. Se debe plantar convenientemente el acuario a fin de que sientan la seguridad de encontrar escondites. Plantaremos el fondo y laterales y dejaremos la parte frontal sin decoración.

Alimentación
Contrariamente a la opinión de muchos aficionados las Corydoras no se alimentan de la basura que cae de la parte de arriba del tanque. Si es verdad que aprovechan los restos de comida que pudieran quedar repartidos por el fondo, pero no se debe dejar su alimentación exclusivamente a estos restos ni se les debe utilizar como regulador de los niveles ni eliminador de los desechos nitrogenados. Las Corydoras son animales Omnívoros que aceptan todo tipo de alimento: vivo, congelado, liofilizado, materia vegetal, tabletas y hojuelas. Conviene aportar media hora antes de apagar la iluminación tabletas de fondo, ya que estos animales tienen costumbres crepusculares y es ahora cuando se muestran más activos.

Diferencias entre sexos

No resulta fácil establecer el sexo de los animales debido a su escaso dimorfismo. Decir que la hembra comúnmente alcanza un mayor tamaño que los machos y unas formas más redondas. También es común que su colorido sea más difuso y apagado.

Asociación
Especie muy social y pacífica que no interactúa con el resto de los pobladores del tanque. Sólo habremos de mantenerla en un grupo numeroso incluso formado por diferentes especies. Podremos asociarla con todo tipo de peces pequeños de aguas blandas.

Reproducción
La cría de esta especie no es difícil y es una de las pocas especies factibles de ser criadas en acuario. Para forzar la puesta que puede producirse varias veces al año y que podremos ver diseminada por entre plantas y rocas, los huevos son muy adhesivos, deberemos bajar el Ph hasta 6,5, agua blanda y temperatura de 26º C. Efectuando incrementos de la temperatura del tanque a 28º durante varios días y disminuyéndola después junto a un cambio de agua, garantizaremos la puesta. La especie no cuida de la puesta de hasta 200 huevos. Añadir un funguicida que evite la aparición de moho y vigilar las condiciones del agua. A los 5 o 6 días eclosionarán los huevos y las larvas caerán al sustrato. Estas pueden ser alimentadas desde un primer momento con infusorios y rotíferos.

Grado de dificultad: principiante, avanzado, experimentado

Aficionado principiante.

Pez paraíso, macrópodo: Macropodus opercularis

2012-08-30T16:19:00.001-07:00

Nombre común: pez paraíso, macrópodo
Nombre Científico: Macropodus opercularis

• Orden: Perciformes
• Familia: Osphromenidae
• Subfamilia: Macropodinae

Biotopo:
Ríos tranquilos y remansos de vegetación abundante.

Distribución:
Actualmente en peligro de extinción en su hábitat natural, los ejemplares que se pueden encontrar a la venta proceden de su cría en cautividad. Originariamente de Asia Oriental aún se puede encontrar en su estado salvaje ocasionalmente en China en el río Yangtze, isla Hainan, Taiwán y norte de Vietnam.

Forma:
Similar a la de otros laberíntidos aunque ligeramente mas alargado y compacto. Sus aletas pectorales se han transformado alargándose y afilándose según se acercan a la punta convitiéndose en filiformes en esa zona. Las aletas dorsal, anal y caudal se encuentran muy desarrolladas.

Coloración:
Su coloración es muy variable siempre en tonos entre naranja, marrón y azul; pero lo que lo diferencia de otros peces de la misma familia son las franjas verticales de colores azul y rojo que recorren todo su cuerpo.
Las aletas pectorales, sin ser tan espectaculares como las del betta, son dignas de mención, habitualmente las tienen replegadas sobre su cuerpo por lo que no podemos admirarlas en todo su esplendor mas que cuando las extienden por algún motivo, entonces es cuando podemos observarlas realmente, de color naranja intenso o blanco en la punta son transparente-azuladas mas cerca del cuerpo, incluso dependiendo de la luz o la posición del pez se ven de distinto color. También hay que mencionar unas “manchas” de forma casi circular en la zona exterior de los opérculos de color azulado bordeada de naranja, en el momento de mostrarse ante otros peces abre las agallas mostrando esas “manchas” que asemejan ojos con lo que parece mucho mas grande de lo que es en realidad.
En acuarios tranquilos donde se encuentren muy relajados la intensidad de los colores suele bajar aumentando en caso de posibles rivales o en la época de cortejo.

Tamaño:
Entre 8 y 12cm aunque lo habitual en acuarios es que no sobrepase los 10cm.

Diferencias sexuales:
En su edad juvenil es bastante difícil diferenciarlos, por un lado los machos suelen ser ligeramente mas grandes y coloridos que las hembras, además de presentar sus aletas anal, dorsal y caudal terminadas en radios filiformes.

Temperatura:
Entre los 18 y los 26º. Aunque hay autores que aconsejan un máx. de 21º

Agua:
Admite aguas entre ligeramente ácidas o alcalinas, PH entre 6-8º y dureza hasta 20º

Acuario:
No es un pez excesivamente exigente en cuanto al tamaño del acuario, con uno de 60l. para un macho con dos o tres hembras bastará. Debemos tener en cuenta su procedencia y procurarle bastantes plantas que sirvan de refugio a los animales menos fuertes o a las hembras acosadas. También agradecerán una buena zona de plantas flotantes.
Es importante que mantengamos el acuario tapado, ya que como otros laberíntidos tiene la costumbre de saltar y nos podemos llevar una desagradable sorpresa, al mismo tiempo hay que dejar espacio para que pueda respirar aire, no olvidemos que los laberíntidos además de respirar en el agua también precisan el oxígeno de la superficie.

Alimentación:
El paraíso es un pez originariamente carnívoro, pero debido a su cría en cautividad actualmente comen también hojuelas o cualquier otro tipo de comida preparada que le demos, de todas formas necesitan su ración de “carne” bien sea en forma de preparados comerciales, gel, congelado o simplemente comida viva.
Por este motivo hemos de tener mucho cuidado con los compañeros de acuario (si es que no optamos por uno específico), cualquier otro pez menor de 3-4cm puede convertirse en su comida. Los invertebrados forman también parte de su alimento, por lo que no debemos olvidar que las gambas se convertirán en un delicioso manjar para ellos.

Comportamiento:
Es un pez sumamente agresivo con los de su propia especie por lo que no se deben tener a dos machos juntos, sino un macho con varias hembras. Así mismo al tener mala vista puede confundir a especimenes de otras especies con rivales, con lo que puede llegar a matarlos. Por este motivo se aconseja mantenerlos en acuarios específicos aunque si el acuario es lo suficientemente grande, con abundante vegetación y escondites no habrá problemas en ponerlos en uno comunitario siempre que tengamos en cuenta el tamaño y la territorialidad del resto de especies.
Se le puede mantener perfectamente con otro tipo de laberíntidos excepto el betta (salvo en muy raras excepciones, en acuarios muy grandes y muy plantados),

Reproducción:
Como el resto de laberíntidos es un constructor de burbujas. Se debe actuar de la misma forma que con el betta con la única diferencia que debemos ir subiendo la temperatura gradualmente hasta los 28º, introducir primero a la hembra en el acuario de cría y a continuación al macho, aunque hay quien aconseja el orden inverso.