Activité biologique des produits naturels

2020-01-14T16:03:00.000-05:00

Voici le reportage complet de LA SEMAINE VERTE concernant notre projet de recherche sur la gale de la patate

LA FORÊT QUI SOIGNE LA PATATE

De plus voici un article en lien avec ce projet :
Canadian goldenrod residues and extracts inhibit the growth of Streptomyces scabiei, the causal agent of potato common scab

Immunofluorescence

2018-04-18T10:30:00.002-04:00

L’immunofluorescence est une méthode de visualisation par fluorescence de composantes spécifiques de la cellule ou d’un tissu. À l’aide d’un microscope à fluorescence, nous sommes en mesure d’observer ces différentes composantes. En effet, notre appareil, Cytation3, nous permet de mesurer une intensité de fluorescence et ainsi de déterminer si la protéine d’intérêt est présente, ce qui nous offre l’opportunité d’obtenir des résultats quantitatifs et qualitatifs de nos expérimentations. Les techniques immunomarquage sont également utiles pour localiser les protéines à l’étude dans les cellules ou le tissu.

WS-1, 4X HaCat, 20X WS-1, 20X

Merci à Audrey Bélanger pour les photos d’immunofluorescence

En résumé, l’immunofluorescence consiste à marquer, à l’aide d’anticorps couplés à un fluorochrome, la protéine que l’on désire étudier. Deux principales méthodes peuvent être utilisées; l’immunofluorescence direct ou l’immunofluorescence indirect.

L’immunofluorescence direct consiste à mettre en contact l’anticorps couplé à un fluorochrome avec les cellules ou le tissu que l’on veut étudier. Ensuite, il suffit d’observer au microscope à fluorescence.

L’immunofluorescence indirect consiste à utiliser successivement deux anticorps, le premier anticorps est dirigé vers la composante qui nous intéresse et le second anticorps couplé à un fluorochrome est dirigé vers le premier.

Source: Wikimedia, Westhayl618

Étudiants

2016-06-01T15:35:00.000-04:00

Slah Hidouri

Projet: Développement de formulations cosmétiques à partirde résidus forestiers et mise au point de formulation d’anticancéreux préalablementencapsulés sur silice.
Étudiant Post-doctorant

Jessica Fortin-Mimeault

Projet: Étude de l'activité cosméceutique de l'Achillée millefeuille
Étudiante Maîtrise en ressources renouvelables (UQAC)

Mouadh Mouhib

Projet: Étude du mode d’action de dérivés glycosylés cytotoxiques.
Étudiant Post-doctorant (UQAC)

Héloĩse Côté (M. Sc.)

Projet: Développement de nouveaux produits phytogènes pour favoriser la croissance animale.
Étudiante au doctorat (UQAC)

Alexis Saint-Gelais (M. Sc.)

Projet: Isolation et identification de nouveaux agents anticancéreux.
Étudiant à la maîtrise en ressources renouvelables (UQAC)

Anciens Étudiants

2016-06-01T15:21:00.000-04:00

*Tous les mémoires de maîtrise et toutes les thèses de doctorat réalisés dans le Laboratoire LASEVE et qui sont disponibles sur le Portail des Mémoires et Thèses du site de l'UQAC afficheront un icone lié directement au texte intégral en fichier pdf. En survolant l'icone, vous devriez pouvoir lire le titre.

Maîtrise:

Marie-Anne Boucher (M. Sc) pdf
Isabelle Côté (M. Sc) pdf
Azadeh Eftekhari (M. Sc) pdf
Charles Sirois (M. Sc) pdf
Charlotte Pichard (M.Sc) pdf
Dominic Dufour (M. Sc) pdf
Éric Chiasson (M. Sc) pdf
Fleur Gagnon (M. Sc) pdf
Jérome Bérubé-Gagnon (M. Sc) pdf
Jonathan Nadeau (M. Sc)
Josette Ross (M.Sc) pdf
Laurie Caron (M. Sc) pdf
Marianne Piochon (M. Sc) pdf
Marie-Eve Bradette-Hébert (M. Sc) pdf
Marie-Eve Ouellette (M. Sc) pdf
Philippe-Aubert Côté (M. Sc) pdf
Philippe Dufour (M. Sc) pdf
Philippe Plourde (M. Sc) pdf
Pierre Morin (M. Sc) pdf
Pierre-Luc Larouche (M. Sc) pdf
Sophie Fortin (M. Sc) pdf
Sylvain Mercier (M. Sc) pdf
Tommy Perron (M. Sc) pdf
Wivecke Dahl (M. Sc) pdf

Doctorat:

Charles Gauthier (Ph D) pdf pdf
Dominic Thibeault (Ph D)pdf
François Simard (Ph D) pdf pdf
Serge Lavoie (Ph D) pdf pdf

Postdoctorat:

Cristina Draghici (Ph D)
Jimmy Bouchard (Ph D)
Murielle Sylvestre (Ph D)
Patricia George (Ph D)

Phénoliques totaux

2016-06-01T13:21:00.000-04:00

Les composés phénoliques sont souvent de puissants antioxydants et il peut être d'intérêt de les doser pour évaluer leur contribution lorsqu'un extrait par exemple montre un potentiel antioxydant. Notre test est fondé sur une méthodologie élaborée dans les années 60 pour doser les composés phénoliques dans le vin. Ce test strictement chimique (n'impliquant pas de cellules vivantes) consiste à faire réagir l'échantillon avec un réactif commercial appelé le Folin-Ciocalteu pour ensuite effectuer une mesure colorimétrique au lecteur de plaques (Varioskan ) qui nous permet de rapporter la concentration phénolique de l'échantillon sur une courbe standard de composés phénoliques connus (typiquement l'acide tannique ou l'acide gallique). Ce test ne se prête malheureusement pas à tous les échantillons parce qu'il peut être affecté par les sucres réducteurs ainsi que les protéines.

Le dosage phénolique est souvent réalisé en parallèle avec le test ORAC et le test de potentiel antioxydant cellulaire.

Quantification d'ADN au Hoechst

2016-06-01T13:46:00.000-04:00

Le Hoechst est une molécule qui devient fluorescente lorsqu'elle se lie à de l'ADN. Une quantification d'ADN est effectuée systématiquement après le test d'activité métabolique à la résazurine lors des tests de potentiel anticancéreux (cytotoxique). Aussi, il est possible d'effectuer un dosage d'ADN à la fin d'autres tests, comme le test de potentiel antioxydant cellulaire par exemple.

Antioxydant cellulaire et ORAC

2016-06-01T14:00:00.000-04:00

Ces deux tests permettent de détecter et de quantifier certaines propriétés antioxydantes des échantillons testés. Le test ORAC est un simple test chimique largement utilisé pour évaluer le potentiel antioxydant. Plus spécifiquement, il peut détecter les antioxydants capables d’éliminer les radicaux peroxyls, mais de par sa nature strictement chimique, ce test ne peut rendre état d’un potentiel dans un contexte cellulaire vivant. Le test sur cellules ne permet pas de discriminer les différents modes d’action des composés testés, mais est sensible à une plus large gamme d’antioxydant, comme par exemple les chélateurs de fer, indétectables par le test ORAC. De plus, le test cellulaire permet la détection de potentiel pro-oxydants qui ne sont pas non plus détectables par le test ORAC. Aussi, le test sur cellule peut renseigner sur la toxicité à court termes des composés testés en réalisant une quantification d’ADN par le Hoescht sur les cellules encore vivantes à la fin du test. Des fibroblastes cutanés sains ( WS-1 ) sont utilisés par défaut pour le test de potentiel antioxydant cellulaire, mais d'autres lignées cellulaires peuvent être utilisées au besoin selon le contexte d'étude.

Les deux tests de potentiel antioxydant se déroulent en microplaques et sont réalisés à l'aide du lecteur de plaque (Fluoroskan ). Les tests sur cellules sont réalisés en microplaques à 96 puits tandis que les tests ORAC sont réalisés en microplaques à 384 puits. Tous les tests antioxydants sont contrôlés en testant en parallèle une variété d’antioxydants connus, comme la quercetine, l’acide caféique, la catéchine, le Trolox, le deferoxamine ou d’autres au besoin. Le test sur cellules renvoie la concentration nécessaire à inhiber 50% de l’oxydation (IC₅₀), tandis que le test ORAC renvoie un équivalent Trolox (µmol Trolox / mg d'échantillon testé).

Le dosage des phénols totaux est souvent réalisé en parallèle avec les tests de potentiel antioxydant lorsque les échantillons testés sont des extraits ou des mélanges complexes.

Publication de notre méthode cellulaire pour évaluer le potentiel antioxydant.

Notre publication rapportant le potentiel antioxydant du sirop d'érable

Resazurine

2016-06-01T14:09:00.000-04:00

La résazurine (7-Hydroxy-3H-phenoxazin-3-one 10-oxide) est une molécule bleue non fluorescente qui peut être réduite par l'activité métabolique (mitochondriale ou bactérienne) pour être transformée en résorufine rose fluorescente. Une mesure de l'activité métabolique à la résazurine est effectuée lors de chaque test de potentiel anticancéreux (cytotoxicité) ainsi que lors des test de potentiel anti-inflammatoire sur les macrophages de souris.

Antioxydant cellulaire et ORAC

2016-06-01T14:16:00.000-04:00

Le dosage des phénols totaux est souvent réalisé en parallèle avec les tests de potentiel antioxydant lorsque les échantillons testés sont des extraits ou des mélanges complexes.

Publication de notre méthode cellulaire pour évaluer le potentiel antioxydant.

Notre publication rapportant le potentiel antioxydant du sirop d'érable

Quantification d'ADN au Hoechst

2016-06-01T14:18:00.000-04:00

Phénoliques totaux

2016-06-01T14:20:00.000-04:00

Le dosage phénolique est souvent réalisé en parallèle avec le test ORAC et le test de potentiel antioxydant cellulaire.

Potentiel Antibiotique (bactéricides & bactériostatiques)

2016-06-01T14:30:00.000-04:00

Notre test antibactérien consiste à cultiver diverses bactéries avec les échantillons et à mesurer l’absorbance développée dans le temps pour ainsi quantifier leur croissance et déterminer une concentration minimale inhibitrice (CMI) ou une concentration minimale bactéricide (CMB). Deux incubations et deux lectures d'absorbance peuvent être nécessaires pour discriminer les bactéricides des bactériostatiques. Tous nos tests de potentiel antibactériens sont réalisés en microplaques à 96 puits et nécessitent un lecteur de plaques capable de mesurer l'absorbance (Varioskan ). Chaque activité antibactérienne est comparée à l'activité de certains antibiotiques utilisés en clinique, comme la gentamycine.
Il est aussi possible de faire un test antibactérien sur disque. Ce test consiste à mettre l'échantillon testé sur un disque de papier buvard que l'on dépose sur une gélose inoculée de la bactérie. Un disque contrôle avec un antibiotique connu est aussi utilisé. Après l'incubation, la mesure du halo autour du disque est effectuée à l’aide d’un vernier.
Nous disposons d'une vaste banque de bactéries qui peuvent être utilisées pour réaliser les tests de potentiel antibactérien. De plus, notre laboratoire étant de confinement niveau 2, nous avons la possibilité de travailler avec des bactéries résistantes aux antibiotiques conventionnels (comme les SARM), provenant directement du milieu hospitalier.
Exemple d'une publication que nous avons réalisée avec les tests de potentiel antibiotique
Phytotherapy Research. 2006 May;20(5):371-3.
Composition and antibacterial activity of Abies balsamea essential oil.
André Pichette, Pierre-Luc Larouche, Maxime Lebrun, Jean Legault.

Antifongique

2016-06-01T14:36:00.000-04:00

Notre test antifongique consiste a mettre la levure Candida albicans en contact avec l'échantillon testé et à mesurer l'absorbance développée dans le temps pour ainsi quantifier leur croissance et déterminer une concentration active. Chaque activité antifongique est comparée à un antifongique connu: l'amphotéricine B.

En résumé, les échantillons à différentes concentrations sont mis en plaque avec les levures. Les plaques sont incubées, après quoi l'absorbance de chaque puit est lue au lecteur de plaques (Varioskan ).

Antiviral

2016-06-01T14:40:00.000-04:00

Notre test antiviral consiste à incuber les virus dans différentes conditions avec les échantillons à tester. Pour l'instant, nous avons la possibilité de tester les échantillons sur deux types de virus, l'herpes simplex type 1 et influenza. Chaque activité antivirale est comparée à des antiviraux connus et utilisés en clinique, le tamiflu et l'acyclovir.

En résumé, les échantillons à différentes concentrations sont mis en plaque avec les virus. S'il s'agit du virus de l'herpes simplex de type 1, les plaques sont colorées et les plages de lyse sont ensuite comptées. S'il s'agit du virus de l'influenza, les plaques sont traitées à la résazurine pour mesurer l'activité métabolique des cellules hôtes et leur fluorescence est mesurée au lecteur de plaques (Varioskan ).

Anti-inflammatoire

2016-06-01T14:43:00.000-04:00

Notre test anti-inflammatoire consiste à mesurer l’inhibition de la production d’oxyde nitrique (NO) produit par des macrophages de souris (RAW 264.7). Chaque activité anti-inflammatoire est contrôlé en comparaison avec un inhbiteur de l'iNOS, le L-name.

Brièvement, notre test consiste à mettre en plaque des macrophages de souris et de les incuber avec les échantillons à différentes concentrations. Du LPS (ou de l'interféron gamma) est ajouté dans les plaques pour provoquer une réaction inflammatoire chez les macrophages et stimuler la production de NO. Après incubation, les surnageants sont recueillis et mis en contact avec un réactif de dosage qui change de couleur en présence de NO (réactif de Griess). Une mesure de l'absorbance de chaque puits est effectuée au lecteur de plaque (Varioskan ). Les plaques vides de leur surnageant sont utilisées pour faire un test d'activité métabolique à la résazurine. Les lectures de fluorescence sont prises au lecteur de plaque (Fluoroskan ).

Potentiel Cytotoxique

2016-06-01T14:48:00.000-04:00

Notre test de potentiel anticancéreux mesure la cytotoxicité des échantillons testés sur une variété de lignées cellulaires cancéreuses (comme A549 et DLD-1 ). L'expérimentation se déroule en deux temps. D'abord, les cellules sont exposées aux échantillons après quoi on mesure leur activité métabolique par le test de réduction de la résazurine. Ensuite, les surnageants sont retirés des plaques pour réaliser un dosage d'ADN par le Hoechst sur les tapis cellulaire toujours présents au fonds des puits et préalablement lysés. Ces deux étapes fondées sur deux méthodes différentes réduisent ensemble les possibilités de faux positifs et de faux négatifs en nous renseignant sur deux aspects attendus d'un anticancéreux. Comme il importe que les anticancéreux ciblent préférentiellement les cellules cancéreuses sans affecter les cellules saines, nous évaluons parallèlement leur sélectivité en mesurant la toxicité des échantillons sur une ou plusieurs lignées cellulaires non cancéreuses (comme WS-1 ). Aussi, chaque test est contrôlé en comparant l'activité de l'échantillon à des anticancéreux connus, comme l'étoposide et le fluorouracile.

Tous les tests de potentiel anticancéreux (cytotoxique) sont réalisés en microplaques à 96 puits et nécessitent un lecteur de fluorescence capable de lire des microplaques ( Fluoroskan ). Chaque expérience évalue l'activité de l'échantillon à plusieurs concentrations et résulte en une IC₅₀. L'état des cellules est aussi observé au microscope (et photographié lorsque nécessaire) après la mesure de l'activité métabolique.

Exemple d'une publication que nous avons réalisée avec le test de potentiel anticancéreux

Molecules. 2008 Nov 26;13(12):2925-34.

Cytotoxic steroidal saponins from the flowers of Allium leucanthum.

Lasha Mskhiladze, Jean Legault, Serge Lavoie, Vakhtang Mshvildadze, Jumber Kuchukhidze, Riad Elias, André Pichette.

Potentiel Hémolytique

2016-06-01T14:50:00.000-04:00

L'hémolyse est la libération de l'hémoglobine des globules rouges suite à une destruction de ces derniers ou à la perméabilisation de leur membrane cellulaire. L'hémolyse est un effet indésirable qu'on cherche à éviter lorsqu'on administre une molécule à un animal ou à un être humain, d'où l'intérêt de tester le potentiel hémolytique de toutes molécules à potentiel thérapeutique lors de leur développement pré-clinique.

Le test de potentiel hémolytique consiste à mettre des globules rouges (du sang) en présence du composé testé durant une certaine période de temps, ensuite de centrifuger le milieu de test (tubes ou microplaques) pour séparer les globules rouges (encore intègres ou rompus) du plasma sanguin dans lequel se trouve l'hémoglobine libre si des globules rouges ont été endommagés. La quantité d'hémoglobine libérée et par extension la proportion de globules rouges affectés peuvent être déterminées par une mesure d'absorbance avec le lecteur de plaques ( Varioskan ). Chaque test de potentiel hémolytique est contrôlé par du sang sans agent hémolytique et du sang complètement hémolysé par un agent hémolytique connu, comme par exemple des saponines. Le test de potentiel hémolytique résulte en une concentration hémolytique à 50%, c'est-à-dire la concentration nécessaire pour provoquer la libération de 50% de l'hémoglobine.

Exemple de publication que nous avons réalisée avec le test de potentiel hémolytique

Bioorganic and Medicinal Chemistry. 2009 Mar 1;17(5):2002-8. Epub 2009 Jan 15.

Haemolytic activity, cytotoxicity and membrane cell permeabilization of semi-synthetic and natural lupane- and oleanane-type saponins.

Charles Gauthier, Jean Legault, Karl Girard-Lalancette, Vakhtang Mshvildadze, André Pichette.

Immunobuvardage de type Western

2016-06-01T14:52:00.000-04:00

L'immunobuvardage de type Western (Western blot) est une mesure semi-quantitative de l'expression des protéines.

Cette technique peut nous informer sur:

l'activation de voies de signalisation cellulaires (phosphorylation de voies spécifiques),
l'induction de marqueurs apoptotiques (clivage de la PARP, activation des caspases et libération de cytochrome c) ou
la modification de l'expression de protéines cibles (récepteurs ou facteurs de transcription).

Brièvement, la mesure de l'expression protéique consiste en quatre étapes distinctes :

l'extraction des protéines totales, cytoplasmiques ou nucléaires;
la séparation électrophorétique des protéines sur un gel d'acrylamide;
leur transfert sur une membrane de PVDF et
l'immunobuvardage de la membrane avec l'anticorps spécifique à la protéine choisie.

Expression de l'ARN messager par PCR

2016-06-01T14:55:00.000-04:00

L'étude de l'expression de certaines protéines est parfois complexe lorsqu'elles sont modifiées post-transcriptionnellement ou que les anticorps disponibles sont peu spécifiques. Dans ce cas, nous pouvons étudier l'expression de l'ARN par PCR (réaction en chaîne par polymérase). Tout d'abord, l'ARN est extrait des cellules puis transcrit en ADN complémentaire par la transcription inverse (RT). Ensuite, les amorces spécifiques se lient à l'ADN complémentaire et l'ADN est amplifié lorsqu'il est exprimé. L'ADN amplifié migre sur un gel d'agarose et nous pouvons quantifier densitométriquement différents paramètres comme l'expression de récepteurs dans nos lignées cellulaires.

Fragmentation de l'ADN

2016-06-01T14:56:00.000-04:00

La mort cellulaire programmée (apoptose) est caractérisée par une augmentation de la fragmentation de l'ADN. Notre laboratoire peut extraire l'ADN de cellules traitées et le faire migrer sur un gel d'agarose. Cette technique nous informe rapidement sur le type de mortalité cellulaire.

Caractérisation de mécanismes d'action cellulaires

2016-06-01T14:58:00.000-04:00

Afin d'évaluer le mécanisme moléculaire de certaines molécules, il peut être utile d'activer ou d'inhiber différentes voies de signalisation cellulaire. Notre laboratoire possède plusieurs agonistes ou antagonistes spécifiques qui peuvent nous donner des indices sur les cibles moléculaires de certains produits. Par exemple, l'ajout d'un antagoniste peut inhiber l'effet anticancéreux d'un échantillon mesuré par le test métabolique (RRT) ou la quantification de l'ADN (Hoechst).

Assistants de recherche (Chimie)

2016-06-02T11:09:00.000-04:00

François Simard

Post-doctorant
Projet: Isolement et identification de composés antibactériens issus des bourgeons de Populus balsamifera

Jérôme Alsarraf:

Post-doctorant
Projet: Exploration et bonification de l'activité anticancéreuse de produits naturels

Balla Sylla

Post-doctorant
Projet: Synthèse de composés naturels et activités biologiques in vitro et in vivo

Assistants de recherche (Biologie)

2016-06-02T11:15:00.000-04:00

Catherine Dussault (Technicienne)

Technique de laboratoire médical (Cégep de Chicoutimi)

Karl Girard-Lalancette (M. Sc)

Maîtrise en Ressources Renouvelables (UQAC)
Baccalauréat en Biologie (UQAC)

Audrey Bélanger (M. Sc)

Maîtrise en sciences pharmaceutiques (Université Laval)
Baccalauréat en Biochimie (Université Laval)

Professeurs-Chercheurs

2016-06-02T15:49:00.000-04:00

Dr Jean Legault SD PM

Expertise:

Études sur les activités biologiques des produits d'origine naturelle

418 545-5011 poste 2334
1 800 463-9880 poste 2334 (sans frais)
418 615-1203 (télécopieur)
Courriel: jean_legault@uqac.ca

Formation académique
Thèmes de Recherche

Évaluation in vitro et in vivo des activités anticancéreuse, antibiotique, antifongique, anti-inflammatoire et anti-oxydante des produits d’origine naturelle;
Étude des mécanismes d’action des produits naturels bio-actifs;
Études toxicologiques.

Dr André Pichette SD PM

Expertise:

Chimie des produits naturels

418 545-5011 poste 5081
1 800 463-9880 poste 5801 (sans frais)
418 615-1203 (télécopieur)
Courriel: andre_pichette@uqac.ca

Formation académique
Thèmes de Recherche

Identification de produits naturels bio-actifs;
Développement d’approches de production de molécules à haute valeur ajoutée;
Préparation d’analogues de produits naturels bio-actifs;
Analyse de produits naturels volatils.

Dr Lionel Ripoll

Expertise :

Étude sur la vectorisation et la formulation d'actifs pharmaceutiques et cosmétiques

418 545-5011 poste 5208
1 800 463-9880 poste 5208 (sans frais)
418 615-1203 (télécopieur)

Courriel : lionel_ripoll@uqac.ca

Formation académique
Thèmes de Recherche

Encapsulation et vectorisation de principes actifs cosmétiques et pharmaceutiques;
Formulation et étude physico-chimique des produits de santé;
Étude in vivo de produits de santé.

Dr Vakhtang Mshvildadze

Expertise :

Pharmacognosie

418 545-5011 poste 2332
1 800 463-9880 poste 2332 (sans frais)
418 615-1203 (télécopieur)
Courriel : vakhtang_mshvildadze@uqac.ca

Formation académique
Thèmes de Recherche

Expertise pharmaceutique de plantes médicinales;
Évaluation phytochimique et pharmaceutique des plantes utilisées par la médecine traditionnelle en Amérique du Nord;
Standardisation des produits naturels bioactives.

Biosécurité: Définitions et Groupes de risque

2010-05-07T13:45:00.018-04:00

Qu'est-ce que la biosécurité ?

La biosécurité représente l'ensemble des mesures visant à prévenir et à contrer les dangers qui sont liés à la manipulation et à l'utilisation de matériel biologique (microorganismes, organismes génétiquement modifiés), dans les laboratoires de recherche, les hôpitaux et les industries. Pour se faire nous devons calculer le niveau de risque, pour ensuite être en mesure d'appliquer les bonnes règles de sécurité.

Comment calculer le risque biologique?

Risque = Danger X Exposition

Danger: Ampleur de l'impact de l'évènement nocif pour la santé et/ou l'environnement
Exposition: probabilité de l'évènement

Comme par exemple; manipuler des bactéries de groupe de risque peu élevé (Danger) chaque jour (Exposition). Dans ce cas, le risque biologique demeure peu élevé puisque les dangers sont bas. Mais il ne faut pas oublier que même si le risque est bas, le danger de contamination est quand même présent. Les organismes pathogènes sont considérés comme des dangers potentiels.

Qu'est-ce qu'un organisme pathogène?

Une entité biologique capable de se reproduire ou de transférer du matériel génétique et responsable d'une maladie infectieuse (chez l'humain). Lorsque l'agent biologique peut se propager chez l'humain ou chez l'animal, on parle alors d'un zoopathogène. Et lorsque l'agent biologique affecte les végétaux, on parle alors de phytopathogène. Par la suite, les organismes pathogènes sont classés par groupe de risques; cette classification se base sur les caractéristiques particulières de l'organisme.

Exemple d'organismes visés par la biosécurité:

Caractéristiques déterminant le groupe de risque:

pathogénicité
dose infectieuse
mode de transmission
gamme d'hôtes
disponibilité des mesures préventives efficaces
disponibilité des traitements efficaces

Quatre groupes de risque sont définis.

Groupe de risque 1

Les agents biologiques du groupe de risque 1 sont peu susceptible d'infecter une personne saine ou un animal sain. Donc ils représentent un risque faible pour la personne et un risque faible pour la collectivité.

Groupe de risque 2

Le groupe de risque 2 englobe les organismes pathogènes susceptibles de provoquer une maladie humaine ou animale, ils constituent rarement un danger grave pour le personnel de laboratoire, pour la collectivité ou pour l'environnement. L'exposition à ces agents pathogènes provoque rarement une infection grave. Toutefois, il existe des mesures préventives et thérapeutiques efficaces en pareil cas, et le risque de propagation est limité. En résumé, le risque est modéré pour la personne qui travaille avec l'organisme et le risque est faible pour la collectivité. Je tiens à souligner que notre laboratoire travaille avec des organismes de groupe de risque 2.

Groupe de risque 3

Ces agents pathogènes provoquent généralement une maladie humaine grave mais qui se transmet rarement par simple contact de personne à personne. Ils causent rarement des maladies ne pouvant pas être traitées. Il existe habituellement des mesures préventives et thérapeutiques efficaces. Le risque est donc élevé pour la personne et faible pour la collectivité.

Groupe de risque 4

Organismes pathogènes causant généralement une maladie humaine très grave, souvent impossible à traiter et facilement transmissible d'un individu à l'autre par contact direct ou indirect. Ils représentent un risque élevé pour la personne et un risque élevé pour la collectivité.

Conclusion

Toute la classification canadienne des agents pathogènes humains par groupe de risque est disponible au Bureau de la sécurité des laboratoire.

Ce premier billet concernant la biosécurité a été produit principalement avec la documentation offerte lors de formation départementale à l'UQAC ainsi qu'avec le document pdf suivant: Lignes directives de l'OMS en matière de biosécurité en laboratoire.

Les niveaux de risque imposent une classification correspondante pour les laboratoires qui travaillent avec ces organismes à risque. Avec cette classification des groupes de risque, les laboratoires sont en mesure de définir leur niveau de confinement. Les niveaux de confinement feront l'objet d'un prochain billet sur la biosécurité.