Biomedicina Padrão

Leucemia Mieloide Crônica (LMC): definição, causas e diagnóstico laboratorial

2026-11-03T04:39:52.025-03:00

Definição

A LMC é uma neoplasia hematológica originada em uma célula-tronco hematopoética que adquire uma alteração genética responsável pela proliferação anormal de células mieloides.

A doença acomete predominantemente adultos e representa aproximadamente 15% dos novos diagnósticos de leucemia nessa população.

Na maioria dos pacientes, o diagnóstico ocorre durante a fase crônica, caracterizada pelo predomínio de células mieloides em diferentes estágios de maturação e por uma proporção relativamente baixa de blastos.

Sem tratamento adequado, a doença pode evoluir para uma fase mais agressiva, denominada fase blástica, que apresenta características semelhantes às das leucemias agudas.

As classificações atuais apresentam diferenças na definição das fases da LMC.

A Organização Mundial da Saúde (OMS), em sua quinta edição, passou a considerar principalmente as fases crônica e blástica, enquanto a International Consensus Classification (ICC) mantém critérios para a fase acelerada.

Etiologia e patogênese

A principal alteração genética da LMC é a translocação recíproca t(9;22)(q34;q11.2), que envolve os cromossomos 9 e 22.

Essa alteração promove a fusão do gene ABL1, localizado no cromossomo 9, com o gene BCR, localizado no cromossomo 22, originando o gene de fusão BCR::ABL1.

O cromossomo 22 alterado recebe o nome de cromossomo Philadelphia (Ph).

A proteína produzida pelo gene BCR::ABL1 apresenta atividade tirosina quinase constitutivamente ativa.

Isso provoca ativação contínua de vias de sinalização intracelular relacionadas à proliferação, sobrevivência e diferenciação celular.

Consequentemente, ocorre expansão clonal de células mieloides, principalmente da linhagem granulocítica.

A proteína BCR::ABL1 mais comum na LMC é a p210, produzida principalmente pelos transcritos e13a2 e e14a2.

A translocação é uma alteração somática adquirida, não sendo considerada uma condição hereditária. Na maioria dos pacientes, a causa exata de seu aparecimento permanece desconhecida.

Diagnóstico laboratorial

O diagnóstico da LMC envolve a avaliação hematológica inicial, a análise da medula óssea e a identificação da alteração genética característica da doença.

O hemograma e a análise morfológica do sangue periférico geralmente fornecem os primeiros indícios, enquanto os exames citogenéticos e moleculares permitem confirmar o diagnóstico.

1. Hemograma e esfregaço de sangue periférico

A leucocitose é uma das alterações laboratoriais mais características da LMC, frequentemente acompanhada de neutrofilia e desvio à esquerda da linhagem granulocítica.

No esfregaço sanguíneo, podem ser observados granulócitos em diferentes estágios de maturação, incluindo mielócitos, metamielócitos, bastonetes e neutrófilos segmentados.

Entre as principais alterações hematológicas estão:

Leucocitose: frequentemente acentuada, podendo ultrapassar 100.000 leucócitos/µL.
Desvio à esquerda: presença de precursores granulocíticos em diferentes estágios de maturação.
Basofilia: aumento absoluto e, frequentemente, relativo dos basófilos, constituindo um achado importante para a suspeita diagnóstica.
Eosinofilia: pode estar presente em diferentes graus.
Anemia: geralmente normocítica e normocrômica, com intensidade variável.
Trombocitose: observada em parte dos pacientes, podendo ser bastante expressiva.

A presença simultânea de leucocitose, desvio à esquerda e basofilia deve levantar a suspeita de LMC, especialmente quando não existe uma causa reacional evidente.

Entretanto, essas alterações não são exclusivas da doença e, isoladamente, não confirmam o diagnóstico.

2. Avaliação da medula óssea

Na fase crônica, a medula óssea geralmente apresenta hipercelularidade, com expansão da linhagem granulocítica e aumento da relação mieloide/eritroide.

Também podem ser observadas alterações megacariocíticas, incluindo megacariócitos pequenos e hipolobulados.

A avaliação morfológica permite caracterizar a doença e determinar a proporção de blastos, aspecto fundamental para sua classificação.

De acordo com os critérios da OMS, a presença de 20% ou mais de blastos no sangue periférico ou na medula óssea caracteriza a fase blástica.

A European LeukemiaNet recomenda a avaliação morfológica da medula óssea no diagnóstico inicial, associada à investigação citogenética.

3. Citogenética convencional

O cariótipo permite identificar o cromossomo Philadelphia, resultante da translocação t(9;22)(q34;q11.2).

A alteração pode ser visualizada na maioria dos pacientes, embora existam translocações variantes e rearranjos crípticos que não são identificados pela análise citogenética convencional.

Além de demonstrar a alteração característica da LMC, o cariótipo permite identificar anormalidades cromossômicas adicionais, que podem apresentar importância prognóstica.

As recomendações laboratoriais da European LeukemiaNet orientam a análise de pelo menos 20 metáfases, preferencialmente 25, no estudo citogenético inicial.

4. Hibridização in situ por fluorescência (FISH)

A técnica de FISH utiliza sondas fluorescentes capazes de identificar o rearranjo entre os genes BCR e ABL1.

Pode ser realizada em células do sangue periférico ou da medula óssea e apresenta utilidade particularmente importante na investigação de rearranjos que não são visualizados pelo cariótipo convencional.

Mas, diferentemente do cariótipo, a FISH direcionada ao BCR::ABL1 não permite avaliar de maneira abrangente outras anormalidades cromossômicas.

5. Diagnóstico molecular por RT-PCR

A identificação do transcrito BCR::ABL1 por métodos moleculares é fundamental para confirmar e caracterizar a LMC.

A RT-PCR permite detectar o RNA correspondente ao gene de fusão, enquanto a RT-qPCR possibilita quantificar os transcritos e acompanhar a resposta molecular ao tratamento.

Os transcritos e13a2 e e14a2 são encontrados em aproximadamente 98% dos pacientes. Mas, existem variantes menos frequentes, como e1a2, e19a2, e13a3 e e14a3.

A identificação do tipo de transcrito no diagnóstico é essencial para selecionar o método adequado de monitoramento posterior.

Um resultado negativo de RT-PCR não exclui completamente a LMC quando o ensaio utilizado não é capaz de detectar transcritos atípicos.

Nesses casos, pode ser necessária investigação molecular complementar.

6. Diagnóstico diferencial

A LMC deve ser diferenciada de condições que também produzem leucocitose e desvio à esquerda, como reações leucemoides e outras neoplasias mieloproliferativas.

As reações leucemoides geralmente estão associadas a infecções, inflamações ou outras condições reacionais.

Alterações como granulações tóxicas, corpúsculos de Döhle e vacuolização citoplasmática podem favorecer uma causa reacional.

A basofilia persistente, especialmente quando associada a leucocitose granulocítica expressiva, aumenta a suspeita de LMC.

Entretanto, a diferenciação definitiva depende da investigação do BCR::ABL1, considerando o conjunto dos achados clínicos e laboratoriais.

Resumo sobre LMC

Exame ou parâmetro	Principais achados
Leucócitos	Leucocitose, frequentemente acentuada
Diferencial leucocitário	Neutrofilia e desvio à esquerda
Basófilos	Basofilia absoluta, frequentemente associada à basofilia relativa
Eosinófilos	Eosinofilia variável
Hemoglobina	Normal ou reduzida; anemia frequentemente normocítica e normocrômica
Plaquetas	Normais ou aumentadas; trombocitopenia pode ocorrer, especialmente em doença avançada
Esfregaço sanguíneo	Granulócitos em diferentes estágios de maturação
Medula óssea	Hipercelularidade e hiperplasia granulocítica
Cariótipo	Cromossomo Philadelphia, t(9;22), ou rearranjos variantes
FISH	Identificação da fusão BCR::ABL1
RT-PCR	Detecção e identificação do transcrito BCR::ABL1
RT-qPCR	Quantificação do BCR::ABL1 para avaliação basal e monitoramento molecular

Considerações finais

O diagnóstico laboratorial da leucemia mieloide crônica começa frequentemente com alterações identificadas no hemograma, principalmente leucocitose, desvio à esquerda e basofilia.

Embora esses achados sejam importantes para levantar a suspeita da doença, a confirmação depende da identificação do rearranjo BCR::ABL1 por métodos citogenéticos ou moleculares.

Referências

APPERLEY, Jane F. et al. 2025 European LeukemiaNet recommendations for the management of chronic myeloid leukemia. Leukemia, v. 39, p. 1797-1813, 2025. DOI: https://doi.org/10.1038/s41375-025-02664-w.

CROSS, Nicholas C. P. et al. European LeukemiaNet laboratory recommendations for the diagnosis and management of chronic myeloid leukemia. Leukemia, v. 37, p. 2150-2167, 2023. DOI: https://doi.org/10.1038/s41375-023-02048-y.

JABBOUR, Elias; KANTARJIAN, Hagop. Chronic myeloid leukemia: 2025 update on diagnosis, therapy, and monitoring. American Journal of Hematology, v. 99, n. 11, p. 2191-2212, 2024. DOI: https://doi.org/10.1002/ajh.27443.

HADDAD, Fadi G.; KANTARJIAN, Hagop. Chronic myeloid leukemia: incorporation of recent advances into current treatment algorithms. Blood Cancer Journal, v. 16, art. 123, 2026. DOI: https://doi.org/10.1038/s41408-026-01527-6.

Melhores empresas para trabalhar na área da saúde em 2026, segundo o GPTW

2026-10-30T04:56:00.273-03:00

O Great Place to Work (GPTW) divulgou o ranking das 175 Melhores Empresas Para Trabalhar no Brasil em 2026.

Entre as organizações premiadas estão hospitais, laboratórios de análises clínicas, operadoras de saúde e empresas das indústrias farmacêutica e de diagnóstico.

A classificação é dividida em três categorias, conforme o número de funcionários: empresas com 100 a 999 colaboradores, de 1.000 a 9.999 e com 10.000 ou mais.

Melhores empresas da área da saúde em 2026

A seguir, estão as empresas relacionadas à saúde humana, ao diagnóstico e à indústria farmacêutica que se destacaram no ranking nacional de 2026.

Posição no ranking	Empresa	Segmento	Porte (funcionários)
20º	Hospital Albert Einstein	Hospitalar	10.000 ou mais
6º	Novo Nordisk	Farmacêutico	1.000 a 9.999
13º	AstraZeneca	Farmacêutico	1.000 a 9.999
16º	Bayer	Farmacêutico	1.000 a 9.999
23º	Boehringer Ingelheim	Farmacêutico	1.000 a 9.999
24º	Unimed Sul Capixaba	Serviços de saúde	1.000 a 9.999
28º	Odontoprev	Saúde odontológica	1.000 a 9.999
40º	Laboratório Sabin	Análises clínicas	1.000 a 9.999
41º	Eurofarma Laboratórios	Farmacêutico	1.000 a 9.999
58º	Unimed Fortaleza	Serviços de saúde	1.000 a 9.999
60º	AbbVie	Biofarmacêutico	1.000 a 9.999
66º	Siemens Healthineers Brasil	Diagnóstico e tecnologia médica	1.000 a 9.999
70º	Libbs	Farmacêutico	1.000 a 9.999
71º	Unimed Porto Alegre	Serviços de saúde	1.000 a 9.999
11º	Supera Farma	Farmacêutico	100 a 999
53º	Chiesi	Farmacêutico	100 a 999
57º	Laboratórios Servier do Brasil	Farmacêutico	100 a 999
66º	All Care	Serviços de saúde	100 a 999

O que esse ranking significa para os biomédicos?

A presença de laboratórios, hospitais e empresas farmacêuticas entre as organizações premiadas mostra que existem diferentes possibilidades de carreira para biomédicos além da rotina tradicional de análises clínicas.

Empresas como Laboratório Sabin, Siemens Healthineers e Hospital Albert Einstein possuem atividades relacionadas ao diagnóstico laboratorial e às tecnologias em saúde.

Já organizações como Novo Nordisk, AstraZeneca e Eurofarma atuam em áreas que podem envolver pesquisa, desenvolvimento, controle da qualidade e produção farmacêutica.

Mas, estar entre as melhores empresas para trabalhar não significa necessariamente oferecer os maiores salários ou as melhores oportunidades específicas para biomédicos.

O que o GPTW avalia?

O Great Place to Work é uma organização que avalia a experiência dos funcionários e a qualidade do ambiente de trabalho nas empresas.

Uma das principais ferramentas utilizadas é a pesquisa Trust Index, respondida de forma confidencial pelos próprios colaboradores. A avaliação considera cinco dimensões:

Credibilidade: confiança na liderança, comunicação e transparência.
Respeito: valorização dos funcionários, apoio profissional e condições de trabalho.
Imparcialidade: tratamento justo, igualdade de oportunidades e ausência de favoritismo.
Orgulho: satisfação em trabalhar na organização e reconhecimento da importância das atividades realizadas.
Camaradagem: qualidade das relações entre colegas, colaboração e sentimento de pertencimento.

A pesquisa contém 60 afirmativas sobre a experiência dos colaboradores.

Para empresas com 100 ou mais funcionários, a metodologia geral dos rankings também considera as práticas organizacionais avaliadas pelo GPTW, além das respostas dos trabalhadores.

Portanto, o ranking não é elaborado apenas com base em salários ou benefícios, mas principalmente na percepção dos funcionários sobre o ambiente de trabalho.

Referências

GREAT PLACE TO WORK BRASIL. 175 Melhores Empresas Para Trabalhar no Brasil em 2026. Disponível em: https://conteudo.gptw.com.br/melhores-empresas-para-trabalhar.

GREAT PLACE TO WORK BRASIL. Trust Index GPTW: o que é, como funciona e como interpretar o resultado. 2026. Disponível em: https://gptw.com.br/conteudo/artigos/trust-index-gptw/.

Quanto um biomédico terá que pagar de anuidade em 2027

2026-10-29T05:20:27.157-03:00

A Resolução nº 433 do Conselho Federal estabelece os valores das anuidades, taxas e emolumentos devidos aos Conselhos Regionais para o ano de 2027.

O valor da anuidade para biomédicos (pessoa física) será de R$ 655,00, com vencimento em 31 de março de 2027, para pagamento em parcela única sem desconto.

Para tecnólogos da área da saúde, a anuidade será de R$ 324,00, enquanto os técnicos da área da saúde pagarão R$ 191,00.

O valor da anuidade para pessoa jurídica depende do capital social registrado, variando de R$ 690,00 a R$ 3.106,00.

Pagamento da anuidade do CRBM em 2027

Há várias opções de pagamento:

Até 29/01/2027, em parcela única, com desconto de 10%, totalizando R$ 589,50;
Até 26/02/2027, em parcela única, com desconto de 5%, totalizando R$ 622,25;
Até 31/03/2027, em parcela única, sem desconto, no valor de R$ 655,00.

A anuidade também poderá ser quitada em até 6 parcelas mensais, iguais e consecutivas, sem desconto, com vencimentos em 29/01, 26/02, 31/03, 30/04, 31/05 e 30/06/2027.

A nova resolução também permite que os Conselhos Regionais ofereçam, a seu critério, um parcelamento extraordinário em até 12 vezes.

E teve aumento

Em 2026, o valor da anuidade dos biomédicos foi de R$ 630,00.

Em 2027, passará para R$ 655,00, representando um aumento de R$ 25,00, aproximadamente 3,97%.

Segundo o CFBM, o reajuste considerou a variação acumulada do INPC entre setembro de 2025 e agosto de 2026, de 3,9833%, adotando como referência o percentual de 4%.

Confira no gráfico abaixo a evolução dos valores das anuidades dos biomédicos, de 2008 até 2027.

O gráfico mostra que a anuidade dos biomédicos passou de R$ 295,98, em 2008, para R$ 655,00, em 2027, representando um aumento nominal acumulado de aproximadamente 121,3%.

Em valores absolutos, a anuidade aumentou R$ 359,02 entre 2008 e 2027, com crescimento médio composto de aproximadamente 4,3% ao ano.

Ao longo desse período, os reajustes não ocorreram de maneira uniforme, destacando-se a estabilidade dos valores entre 2020 e 2022 e a retomada dos aumentos anuais a partir de 2023.

Outras novidades para 2027

A resolução também estabelece desconto de 50% na anuidade de inscrições suplementares mantidas em outro Conselho Regional, mediante apresentação anual da documentação de regularidade exigida.

Para pessoas jurídicas, filiais, unidades secundárias e postos de coleta vinculados a laboratórios poderão pagar 50% do valor da anuidade da matriz, desde que atendidas as condições previstas na resolução.

Em caso de atraso, será aplicada multa de 0,33% ao dia, limitada a 20%, além de juros calculados com base na taxa Selic.

A Resolução nº 433/2026 entra em vigor em 1º de janeiro de 2027, quando substituirá a Resolução nº 402/2025.

Referência

CONSELHO FEDERAL DE BIOMEDICINA. Resolução CFBM nº 433, de 9 de outubro de 2026. Diário Oficial da União, Brasília, DF, 13 out. 2026, seção 1, p. 180. Disponível em: https://cfbm.gov.br/wp-content/uploads/2026/10/13-10-26-DOU-CFBM-ATO-RES-433.pdf.

O que é um exame laboratorial? Definição, tipos e requisitos de qualidade

2026-10-24T04:45:35.952-03:00

Um exame laboratorial é muito mais do que apenas identificar uma substância numa amostra biológica ou produzir um resultado numérico.

Para ser utilizado na prática, ele precisa ter:

Desempenho analítico adequado
Evidências científicas que sustentem sua aplicação clínica
Condições seguras de execução

Isso significa que nem toda substância que pode ser medida ou detectada em uma amostra biológica representa, necessariamente, um marcador útil para diagnóstico, prognóstico ou acompanhamento de doenças.

A avaliação de um exame envolve três conceitos fundamentais:

Validade analítica
Validade clínica
Utilidade clínica

O que define um exame laboratorial

De acordo com a RDC Anvisa nº 978/2025, um Exame de Análises Clínicas (EAC) é um processo operacional composto pelas fases pré-analítica, analítica e pós-analítica.

O objetivo é determinar valores ou características de uma amostra biológica.

Esse conceito se aplica a diferentes áreas, como bioquímica, hematologia, microbiologia, imunologia, genética, biologia molecular e outras especialidades laboratoriais.

Os exames podem apresentar resultados quantitativos, qualitativos ou semiquantitativos e ser utilizados para diferentes finalidades, incluindo:

Triagem
Diagnóstico
Prognóstico
Estadiamento
Monitoramento
Resposta ao tratamento

Mas, a finalidade desse exame deve estar clara, pois seu resultado pode ter significados diferentes dependendo do grupo de pacientes e da doença.

Por exemplo, um marcador tumoral que é utilizado para a triagem mas não para fechar o diagnóstico.

Tipo de exame	Exemplos de resultados
Quantitativo	Glicose: 95 mg/dL; TSH: 2,5 mUI/L.
Qualitativo	Reagente ou não reagente; positivo ou negativo.
Semiquantitativo	Proteínas: 1+; VDRL: 1:8; Cetonas: 2+.

Validade analítica

O exame mede corretamente?

A validade analítica corresponde à capacidade de um método detectar ou medir o analito de interesse com desempenho adequado.

Para demonstrar esse desempenho, diferentes parâmetros podem ser avaliados, dependendo da natureza do exame:

Característica	O que avalia
Precisão	Proximidade entre resultados de medições repetidas
Veracidade e viés	Proximidade em relação ao valor de referência e presença de erro sistemático
Sensibilidade analítica	Capacidade de detectar pequenas quantidades do analito
Especificidade analítica	Capacidade de medir o alvo sem interferência relevante de outras substâncias
Linearidade	Capacidade de um exame de medir corretamente diferentes concentrações de uma substância
Intervalo de medição	Faixa de valores que o método consegue medir adequadamente
Interferentes	Influência de substâncias ou condições sobre o resultado

Essas características precisam atender a critérios de desempenho previamente estabelecidos, considerando a finalidade clínica do exame.

A boa notícia é que se for um exame comercial (com bula/instruções de uso) a empresa fabricante já fez todo esse trabalho de validação.

O nosso papel é somente verificar se o que consta na bula realmente se reproduz no nosso laboratório.

Mas, atenção! Na hora de executar o teste a gente tem que seguir tudo como está escrito lá, pois qualquer adaptação feita pode afetar o resultado.

E ainda, um método pode medir uma substância com excelente precisão e, ainda assim, não apresentar utilidade clínica comprovada.

Validade clínica

O resultado está associado à condição investigada?

A validade clínica corresponde à capacidade de um exame identificar, classificar ou prever adequadamente uma condição clínica de interesse.

Nesse contexto, não basta demonstrar que um analito pode ser medido.

É necessário estabelecer uma relação cientificamente fundamentada entre o resultado e a condição investigada.

Nos testes diagnósticos, duas características são especialmente importantes:

Sensibilidade diagnóstica: proporção de indivíduos com a condição investigada que apresentam resultado positivo.
Especificidade diagnóstica: proporção de indivíduos sem a condição investigada que apresentam resultado negativo.

Outras medidas, como valores preditivos e razões de verossimilhança, também contribuem para a interpretação do desempenho clínico.

Por exemplo, determinado biomarcador pode apresentar concentrações elevadas em pacientes com uma doença, mas também aumentar em diversas outras condições.

Nesse caso, apesar de existir associação biológica, sua capacidade de diferenciar indivíduos com e sem a doença pode ser limitada.

Sendo assim, um exame validado para determinada aplicação não está automaticamente validado para todas as situações clínicas.

Utilidade clínica

O exame realmente contribui para a assistência ao paciente?

A utilidade clínica representa o benefício que a utilização de um exame pode proporcionar à tomada de decisão e aos resultados da assistência à saúde.

Um teste pode apresentar boa validade analítica e clínica, mas acrescentar pouca informação relevante aos exames já disponíveis.

Para avaliar sua utilidade, algumas perguntas são fundamentais:

O resultado pode modificar uma decisão clínica?
O exame permite identificar uma condição que não seria detectada adequadamente pelos métodos existentes?
Sua utilização pode contribuir para melhorar o diagnóstico, o tratamento ou o acompanhamento do paciente?
Os benefícios esperados justificam os custos e os possíveis riscos de sua utilização?

A utilidade clínica deve considerar o impacto dos resultados nas decisões assistenciais, nos desfechos dos pacientes e na utilização dos recursos de saúde.

Um exemplo é a introdução de um novo biomarcador para diagnóstico precoce.

Mesmo que ele apresente elevada sensibilidade, sua incorporação à rotina deve considerar se a identificação antecipada da doença permite alguma intervenção clinicamente relevante.

Assim, a utilidade de um exame não depende apenas de sua capacidade de detectar alterações, mas também do valor das informações obtidas para o cuidado do paciente.

Um exame pode ser tecnicamente confiável e clinicamente inadequado?

Sim.

Imagine um biomarcador que apresenta excelente precisão e baixa variabilidade entre medições.

Essas características demonstram um bom desempenho analítico.

Mas, se esse biomarcador não consegue diferenciar adequadamente pacientes com e sem determinada doença, sua validade clínica para essa finalidade será limitada.

Da mesma forma, um exame pode apresentar bom desempenho diagnóstico, mas não modificar as decisões assistenciais em relação aos métodos já utilizados.

Essas situações demonstram que confiabilidade analítica, desempenho clínico e utilidade clínica são requisitos complementares.

Por causa de todas essas variáveis que até hoje a dosagem de cistatina C sérica não substituiu a dosagem de creatinina sérica, por exemplo.

Referências

BRASIL. Agência Nacional de Vigilância Sanitária. Resolução RDC nº 978, de 6 de junho de 2025. Dispõe sobre o funcionamento de serviços que executam as atividades relacionadas aos Exames de Análises Clínicas (EAC). Brasília: Anvisa, 2025.

INTERNATIONAL ORGANIZATION FOR STANDARDIZATION. ISO 15189:2022: Medical laboratories: requirements for quality and competence. Geneva: ISO, 2022. Disponível em: https://www.iso.org/standard/15189.

CLINICAL AND LABORATORY STANDARDS INSTITUTE. EP19: A framework for using CLSI documents to evaluate medical laboratory test methods. 3. ed. Malvern: CLSI, 2022. Disponível em: https://clsi.org/shop/standards/ep19/.

LORD, S. J. et al. Is this test fit-for-purpose? Principles and a checklist for evaluating the clinical performance of a test in the new era of in vitro diagnostic (IVD) regulation. Critical Reviews in Clinical Laboratory Sciences, v. 62, n. 3, p. 182-197, 2025. DOI: https://doi.org/10.1080/10408363.2025.2453148.

BADRICK, Tony; BOWLING, Francis. Clinical utility: information about the usefulness of tests. Clinical Biochemistry, v. 121-122, art. 110656, 2023. DOI: https://doi.org/10.1016/j.clinbiochem.2023.110656.

Reticulócitos: entenda RET%, RET#, IRF e Ret-He

2026-10-20T23:01:28.238-03:00

A contagem de reticulócitos é um dos principais exames utilizados para avaliar a atividade eritropoiética da medula óssea.

Além de auxiliar na investigação das anemias, a análise automatizada permite obter parâmetros adicionais que fornecem informações sobre a maturação dos reticulócitos e seu conteúdo de hemoglobina.

Mas, apesar dos avanços nas tecnologias, ainda existem diferenças importantes entre os resultados produzidos pelos analisadores hematológicos, especialmente nos parâmetros derivados.

Um estudo conduzido por um grupo de trabalho do International Council for Standardization in Haematology (ICSH), publicado em 2024, investigou a comparabilidade dos resultados de reticulócitos entre diferentes sistemas analíticos e identificou desafios que ainda precisam ser superados para alcançar sua padronização.

O que são reticulócitos

Os reticulócitos são eritrócitos jovens que ainda apresentam material ribossômico residual.

Sua quantificação permite avaliar a resposta eritropoiética, sendo particularmente útil na investigação de pacientes com anemia.

A contagem de reticulócitos auxilia na diferenciação de condições associadas à redução da produção de eritrócitos, como as anemias hipoproliferativas, daquelas relacionadas ao aumento da destruição ou perda sanguínea, como as anemias hemolíticas e as hemorragias.

Tradicionalmente, a contagem é realizada manualmente, utilizando colorações supravitais para evidenciar o material reticular presente nessas células.

Coloração de reticulócitos com azul de cresil brilhante

Com o desenvolvimento dos analisadores hematológicos automatizados, passaram a ser utilizadas metodologias mais sensíveis, incluindo corantes específicos para ácidos nucleicos, fluorescência, dispersão de luz e citometria de fluxo.

Essas tecnologias melhoraram a precisão analítica, aumentaram a eficiência dos laboratórios e permitiram desenvolver novos parâmetros relacionados à biologia dos reticulócitos.

Parâmetros derivados

Além da contagem percentual e absoluta, os analisadores hematológicos modernos podem fornecer índices relacionados à maturidade celular e ao conteúdo de hemoglobina dos reticulócitos.

A contagem percentual expressa a proporção de reticulócitos em relação ao total de eritrócitos analisados.

No estudo do ICSH, esse foi o parâmetro que apresentou a melhor comparabilidade entre diferentes sistemas analíticos.

A contagem absoluta representa a quantidade de reticulócitos por unidade de volume sanguíneo.

Diferentemente da contagem percentual, esse resultado é calculado a partir de dois parâmetros: a porcentagem de reticulócitos e a contagem total de eritrócitos.

Contagem absoluta de reticulócitos = RET% × contagem de eritrócitos

Fração de reticulócitos imaturos (IRF)

A Immature Reticulocyte Fraction (IRF), ou fração de reticulócitos imaturos, é um parâmetro relacionado ao grau de maturação dos reticulócitos circulantes.

Nos analisadores automatizados, os reticulócitos são classificados em subpopulações conforme seu grau de maturidade, utilizando tecnologias e algoritmos específicos de cada fabricante.

Esse parâmetro acrescenta informações sobre a atividade eritropoiética, mas apresenta um importante problema analítico: os resultados de IRF produzidos por diferentes equipamentos ainda não são suficientemente harmonizados.

Consequentemente, a interpretação da IRF exige atenção à metodologia empregada, especialmente quando resultados obtidos em equipamentos diferentes são comparados.

Conteúdo de hemoglobina dos reticulócitos (RHC)

O conteúdo de hemoglobina dos reticulócitos, denominado no estudo como Reticulocyte Hemoglobin Content (RHC), fornece uma medida relacionada à quantidade de hemoglobina presente nos reticulócitos.

Esse parâmetro acrescenta informações sobre a hemoglobinização dos eritrócitos jovens e representa um dos avanços proporcionados pela análise automatizada.

Mas, sua determinação não é uniforme entre os fabricantes. Diferentes sistemas utilizam tecnologias e cálculos próprios, além de nomenclaturas específicas.

Entre as denominações apresentadas no artigo, destacam-se:

Parâmetro	Fabricante
Ret-He	Sysmex
CHr	Siemens e Mindray
MCHr	Abbott
RhCc	Horiba

Embora esses parâmetros estejam relacionados ao conteúdo de hemoglobina dos reticulócitos, não se deve assumir que seus valores são diretamente intercambiáveis entre diferentes sistemas analíticos.

No estudo, o RHC apresentou concordância intermediária entre a contagem percentual de reticulócitos e a IRF.

Resultados do estudo

Para investigar a comparabilidade dos resultados, os pesquisadores analisaram 855 amostras de pacientes, provenientes de seis instituições, utilizando nove modelos distintos de analisadores hematológicos.

Foram realizadas 15 comparações entre sistemas analíticos, com avaliação de três parâmetros: RET%, IRF e RHC.

Os resultados demonstraram diferenças importantes na comparabilidade e na precisão dos parâmetros.

Imprecisão analítica

A imprecisão foi avaliada por meio dos coeficientes de variação (CV) obtidos a partir de medições repetidas das amostras.

O conteúdo de hemoglobina dos reticulócitos apresentou a menor imprecisão, enquanto a IRF demonstrou a maior variabilidade entre as medições.

Esses resultados mostram que a incorporação de novos parâmetros ao laudo hematológico deve considerar não apenas sua utilidade clínica, mas também seu desempenho analítico.

Desafios

Um dos principais problemas identificados pelos pesquisadores é a ausência de materiais de referência com comutabilidade adequada para os diferentes sistemas analíticos.

A comutabilidade é a propriedade que permite que um material utilizado na avaliação laboratorial apresente comportamento comparável ao das amostras de pacientes quando analisado por diferentes métodos.

No caso dos reticulócitos, essa padronização é dificultada pela instabilidade das amostras, principalmente dos parâmetros relacionados à detecção de RNA residual.

Além disso, os fabricantes utilizam diferentes reagentes, tecnologias de detecção e algoritmos para calcular os parâmetros derivados.

Aplicação no laboratório clínico

A principal implicação é que a disponibilidade de um parâmetro no analisador hematológico não garante que seus resultados possam ser comparados diretamente aos de outros equipamentos.

A contagem percentual de reticulócitos apresentou melhor concordância entre os sistemas avaliados, enquanto a IRF demonstrou diferenças mais expressivas.

O conteúdo de hemoglobina dos reticulócitos, embora tenha apresentado boa precisão nas medições repetidas, também apresentou diferenças metodológicas relevantes.

Então, se seu laboratório for incorporar esses parâmetros da automação no laudo, é importante que esteja explícito qual o analisador e metodologia foi utilizada.

Se você já faz contagem de reticulócitos manualmente, sabe que a automação transformou a análise de reticulócitos, permitindo que o laboratório clínico obtenha informações mais detalhadas sobre os eritrócitos jovens.

A padronização desses "novos" parâmetros ainda é um desafio importante para a hematologia laboratorial.

Referências

OBSTFELD, Amrom E. et al. Report of the International Council for Standardization in Haematology working group for standardization of reticulocyte parameters. International Journal of Laboratory Hematology, v. 46, n. 2, p. 266-274, 2024. DOI: https://doi.org/10.1111/ijlh.14209.

CELLWIKI. RET - Normal. CellWiki: Hematology, [s. d.]. Disponível em: https://www.cellwiki.net/en/scatters/ret-normal. Acesso em: 20 out. 2026.

Diagnóstico laboratorial da sífilis: avanços, automação e novas perspectivas

2026-10-19T04:58:23.533-03:00

O diagnóstico laboratorial da sífilis continua sendo um desafio, mesmo após décadas de uso consolidado de testes sorológicos.

Infelizmente, não existe um único exame seja capaz de identificar todos os casos com alta sensibilidade em todas as fases da doença.

Por isso, a estratégia diagnóstica ainda depende da combinação de testes treponêmicos e não treponêmicos, juntos ao contexto clínico e epidemiológico.

A principal mudança observada nos últimos anos não foi a substituição da sorologia, mas sua automação, reorganização em novos algoritmos e integração com métodos rápidos e moleculares.

A sorologia permanece como base do diagnóstico da sífilis, enquanto novas tecnologias atuarão principalmente como ferramentas complementares.

Sorologia para sífilis

Os testes sorológicos permanecem como principal estratégia diagnóstica para praticamente todos os estágios da sífilis.

Eles são divididos em dois grandes grupos:

Testes treponêmicos, que detectam anticorpos contra antígenos de T. pallidum
Testes não treponêmicos, que detectam anticorpos contra antígenos lipoidais associados à infecção e à lesão tecidual

Entre os antígenos empregados nos testes treponêmicos estão as lipoproteínas TpN15, TpN17 e TpN47.

Os anticorpos IgM treponêmicos podem surgir cerca de 2 semanas após a infecção, enquanto os anticorpos IgG aparecem posteriormente e geralmente permanecem detectáveis por longos períodos, frequentemente por toda a vida.

Por isso, um teste treponêmico positivo não diferencia infecção ativa de infecção previamente tratada.

Então, os testes não treponêmicos continuam sendo essenciais para avaliação de atividade da doença e monitoramento terapêutico.

Titulação de VDRL

O título do teste não treponêmico deve ser sempre informado.

O resultado quantitativo dos testes não treponêmicos é essencial para o acompanhamento da resposta terapêutica.

Após tratamento adequado, espera-se geralmente uma redução de pelo menos quatro vezes no título, equivalente a duas diluições, ao longo do acompanhamento.

Uma elevação sustentada de quatro vezes pode indicar reinfecção, falha terapêutica ou tratamento inadequado.

Por isso, um resultado como apenas “VDRL reagente” fornece informação incompleta.

O laboratório deve informar o título final, por exemplo:

VDRL: reagente
Título: 1:32

O fenômeno de prozona

Nos testes não treponêmicos, concentrações muito elevadas de anticorpos podem impedir a formação adequada da rede de floculação e gerar um resultado falsamente negativo.

Esse fenômeno é conhecido como prozona.

Aproximadamente 1% das amostras podem apresentar esse efeito em determinadas situações, especialmente em sífilis primária e secundária com títulos muito elevados.

A diluição da amostra pode resolver o problema.

Isso significa que um resultado não reagente não deve ser interpretado isoladamente quando existe forte suspeita clínica.

Algoritmo clássico e reverso

A investigação sorológica pode seguir dois modelos principais.

No algoritmo clássico (Fluxograma 1), o laboratório inicia com um teste não treponêmico, geralmente VDRL.

As amostras reagentes são então avaliadas por um teste treponêmico confirmatório.

Não treponêmico → Treponêmico

Esse modelo é eficiente para identificar doença ativa, mas possui menor sensibilidade nas fases muito iniciais e tardias.

Com a expansão dos imunoensaios automatizados, muitos laboratórios passaram a utilizar o algoritmo reverso (Fluxograma 2):

Treponêmico automatizado → Não treponêmico → Treponêmico diferente, em caso de discordância

Os testes treponêmicos automatizados permitem grande volume de processamento e excelente desempenho analítico.

Novos desafios da automação

Quando o teste treponêmico inicial é reagente e o VRDL é não reagente, o resultado precisa ser esclarecido com outro teste treponêmico baseado em metodologia ou antígenos diferentes.

Esse cenário pode representar:

infecção previamente tratada
sífilis muito recente
sífilis latente
um resultado treponêmico falso-positivo

Por isso, a automação resolveu parte do problema de produtividade, mas aumentou a necessidade de interpretação integrada e algoritmos bem definidos.

RPR automatizado

Um dos avanços mais relevantes para o laboratório clínico é a disponibilidade de plataformas capazes de realizar RPR (Rapid Plasma Reagin) quantitativo automatizado.

Esses sistemas podem:

reduzir o tempo de resposta
diminuir trabalho manual
aumentar a capacidade de processamento
reduzir parte da subjetividade da leitura visual da floculação

Testes rápidos

Os testes point-of-care, ou POC, representam outro avanço importante.

Atualmente existem testes imunocromatográficos capazes de detectar anticorpos treponêmicos utilizando sangue total obtido por punção digital, sangue venoso, soro ou plasma.

A principal vantagem não é necessariamente maior sensibilidade, mas a possibilidade de fornecer resultado em poucos minutos e permitir diagnóstico e tratamento na mesma oportunidade de atendimento.

Isso pode ser especialmente relevante em:

Gestantes
Populações com dificuldade de acesso ao sistema de saúde
Pessoas em situação de rua
Locais onde existe alto risco de perda de seguimento

Em um estudo, pacientes que fizeram teste rápido receberam tratamento em mediana de 1 dia, enquanto aqueles submetidos ao fluxo laboratorial tradicional receberam tratamento em mediana de 9 dias.

Detecção direta do Treponema pallidum

Os métodos de detecção direta procuram pelo próprio microrganismo ou seu material genético.

Historicamente, a microscopia de campo escuro foi considerada uma importante ferramenta para avaliação das lesões da sífilis primária.

Mas, seu uso na prática diminuiu muito nas últimas décadas.

Na anatomia patológica, a imunohistoquímica pode ser utilizada para identificação de T. pallidum, embora possa ocorrer reação cruzada com outras espiroquetas.

PCR para sífilis

Os testes de amplificação de ácidos nucleicos, NAAT, transformaram o diagnóstico de várias infecções sexualmente transmissíveis, mas da sífilis ainda não.

Várias tecnologias já foram estudadas:

PCR convencional
PCR em tempo real
RT-PCR
Amplificação mediada por transcrição (LAMP)
Combinação de PCR com amplificação de sinal baseada em CRISPR

A principal limitação é a grande variação da sensibilidade conforme o estágio da doença, tipo de amostra, carga bacteriana e método de extração.

A concentração do T. pallidum varia conforme o estágio da doença e o local de coleta.

O tipo de amostra interfere muito na PCR.

Em swabs de lesões, a sensibilidade molecular fica em torno de 65% a 80%, enquanto amostras utilizadas para rastreamento apresentam desempenho inferior.

Neurossífilis

Na neurossífilis, o desempenho molecular permanece limitado devido à baixa carga de treponemas no líquor e ao pequeno volume disponível para extração.

Por isso, um PCR negativo no líquor não exclui neurossífilis.

O VDRL no líquor permanece importante. Um resultado reagente apoia fortemente o diagnóstico, embora sua ausência também não seja suficiente para descartar a doença.

Sífilis congênita

Na sífilis congênita, PCR e outros NAATs vêm sendo avaliados em líquido amniótico, placenta, cordão umbilical e tecidos, mas os resultados são muito heterogêneos.

Na prática, a comparação dos títulos não treponêmicos materno e neonatal continua importante.

Um título neonatal pelo menos quatro vezes maior que o materno é altamente sugestivo de sífilis congênita.

Idealmente, as amostras devem ser analisadas simultaneamente e no mesmo laboratório.

O futuro do diagnóstico da sífilis

O cenário não sugere que PCR ou outras novas tecnologias substituirão rapidamente os testes sorológicos.

Pelo contrário, a tendência é uma evolução baseada na combinação de:

Sorologia automatizada
Testes rápidos
Métodos moleculares complementares
Integração dos históricos laboratoriais

Outro objetivo importante será a harmonização dos títulos não treponêmicos.

O que muda para o laboratório clínico?

Para o biomédico, talvez o principal avanço não esteja em um único “novo exame”, mas na transformação do processo diagnóstico.

A tendência é sair de um modelo predominantemente manual e fragmentado para um sistema mais automatizado, rápido e integrado.

Referência

Brasil. Ministério da Saúde. Manual Técnico para Diagnóstico da Sífilis. Brasília - Ministério da Saúde, 2021.

TREGER, Rebecca S.; MENZA, Tim W.; TRUONG, Thao T.; LIEBERMAN, Joshua A. Advances in syphilis diagnostics to address the 21st-century epidemic. Clinical Chemistry, v. 71, n. 9, p. 935-948, 2025. DOI: 10.1093/clinchem/hvaf072.

Clonalidade de linfócitos: diferença entre população policlonal, monoclonal e reacional

2026-10-16T07:33:21.176-03:00

A clonalidade dos linfócitos indica se uma população linfocitária se originou de múltiplos clones diferentes ou da expansão predominante de um único clone.

Linfócitos policlonais

Em processos reativos, como infecções e estímulos imunológicos, ocorre geralmente uma expansão policlonal.

Isso significa que vários clones de linfócitos são ativados ao mesmo tempo, cada um com receptores diferentes.

É uma resposta fisiológica e heterogênea do sistema imune.

Linfócitos monoclonais

Nas neoplasias linfoproliferativas, como a LLC, ocorre expansão clonal ou monoclonal.

Nesse caso, grande parte das células deriva de um mesmo clone e compartilha características imunofenotípicas semelhantes.

Nos linfócitos B, essa clonalidade pode ser demonstrada pela restrição de cadeia leve, com predomínio de kappa ou lambda, em vez da distribuição mista esperada em uma população policlonal.

Como avaliar a clonalidade no laboratório

No laboratório, a clonalidade linfocitária é avaliada principalmente pela imunofenotipagem por citometria de fluxo. Nos linfócitos B, verifica-se a expressão das cadeias leves das imunoglobulinas, kappa (κ) e lambda (λ).

Em uma população policlonal, como ocorre habitualmente em respostas reacionais, encontram-se células expressando tanto kappa quanto lambda, mantendo uma distribuição relativamente heterogênea.

Já em uma população clonal, observa-se restrição de cadeia leve, ou seja, predomínio marcante de kappa ou de lambda, indicando que grande parte das células deriva do mesmo clone.

A avaliação não deve se limitar à relação kappa/lambda.

É necessário analisar conjuntamente o padrão de expressão dos demais marcadores e procurar uma população celular com fenótipo anormal e uniforme.

Na LLC, por exemplo, a demonstração de uma população B clonal costuma ser feita pela associação entre restrição de cadeia leve e o imunofenótipo característico, como CD19+, CD5+, CD23+ e CD200+, com expressão geralmente fraca de CD20 e imunoglobulina de superfície.

Em resumo

Policlonalidade sugere resposta reacional.

Monoclonalidade sugere expansão clonal e levanta a possibilidade de neoplasia.

Em ambos os casos, sempre deve-se interpretar os resultados junto com morfologia, imunofenótipo e contexto clínico.

Como é feito o diagnóstico da leucemia linfocítica crônica (LLC)? Hemograma, esfregaço e imunofenotipagem

2026-10-16T05:24:32.816-03:00

Este post traz as atualizações mais recentes sobre a LLC. Confira!

Definição

A leucemia linfocítica crônica (LLC) é uma neoplasia de células B maduras, caracterizada pela proliferação e acúmulo de linfócitos B clonais, principalmente no sangue periférico, medula óssea, linfonodos e baço.

Na classificação atual, a LLC integra o grupo das neoplasias de células B maduras e faz parte do mesmo espectro biológico que:

Linfocitose B monoclonal (MBL)
Linfoma linfocítico de pequenas células (SLL)

Do ponto de vista laboratorial, para caracterizar a LLC é necessário encontrar no hemograma no mínimo 5.000 linfócitos/µL.

É importante que seja uma linfocitose persistente por pelo menos 3 meses, para descartar aumento reacional (em infecções, por exemplo).

A clonalidade dos linfócitos deve ser avaliada por meio da imunofenotipagem por citometria de fluxo.

Leia também: Como identificar linfócitos atípicos

Etiologia e patogênese

A etiologia da LLC permanece desconhecida.

Pode haver uma provável participação de fatores genéticos e ambientais, visto que há maior frequência da doença entre familiares de pacientes com LLC e sua distribuição diferente entre populações.

Cerca de 5% a 10% dos pacientes apresentam histórico familiar, reforçando a contribuição genética.

Do ponto de vista biológico, a doença resulta do acúmulo progressivo de um clone de células B.

Alterações genômicas interferem principalmente nos mecanismos de:

Proliferação
Apoptose
Resposta ao dano do DNA
Sinalização celular

Ou seja, os linfócitos doentes se proliferam e não "morrem".

Cerca de 80% dos pacientes apresentam pelo menos uma das alterações cromossômicas mais comuns:

del(13q)
del(11q)
del(17p)
trissomia 12

Entre elas, a del(13q) é a alteração cromossômica mais frequente.

Já a del(17p) envolve a região onde se encontra o gene TP53, cuja alteração apresenta grande importância prognóstica e terapêutica.

Diagnóstico laboratorial da LLC

Os três pilares são:

Hemograma
Morfologia do sangue periférico
Imunofenotipagem

Hemograma

A alteração clássica é a linfocitose absoluta persistente.

Ou seja, mais de 5.000 linfócitos/µL no sangue periférico por pelo menos 3 meses.

O paciente pode ter associado também anemia e/ou trombocitopenia.

Entre 15 e 30% dos pacientes apresentam citopenias que podem estar relacionadas a infiltração dos linfócitos na medula óssea ou a reações autoimunes, como a anemia hemolítica autoimune.

O hemograma serve para triagem e acompanhamento da persistência da linfocitose, visto que é um exame mais barato e de simples execução.

Porém, não dá para usar somente o hemograma pois é necessário demonstrar que existe uma população B clonal.

Avaliação da morfologia em sangue periférico

A avaliação morfológica deve fazer parte da investigação.

Como são os linfócitos da LLC?

Tipicamente são:

Pequenos
Maduros
Com pouco citoplasma
Núcleo denso
Cromatina parcialmente condensada
Nucléolos não evidentes

Podem coexistir células maiores, formas atípicas e prolinfócitos.

Sombras (manchas) de Gumprecht

As sombras nucleares de Gumprecht, ou smudge cells, representam restos celulares formados principalmente pela fragilidade dos linfócitos doentes durante a preparação do esfregaço.

São um achado morfológico característico e frequente da LLC, mas não estabelecem o diagnóstico isoladamente.

Imunofenotipagem por citometria de fluxo

Este é o exame decisivo para confirmar a natureza clonal da população B.

O perfil clássico da LLC apresenta coexpressão de:

CD19+
CD5+
CD23+

Vale destacar também expressão de CD20 e CD79b geralmente fraca, imunoglobulina de superfície reduzida e restrição para uma das cadeias leves, kappa ou lambda, demonstrando a natureza clonal da população.

Para investigação diagnóstica recomenda-se usar os seguintes marcadores:

CD19
CD20
CD5
CD23
CD200
CD79b
kappa e lambda

Marcadores adicionais podem ser incorporados em situações duvidosas ou limítrofes, como:

CD43
CD81
ROR1
CD10
CD200

Marcador	LLC típica
CD19	+
CD5	+
CD23	+
CD200	+
CD20	Fraco
CD79b	Fraco
Ig de superfície	Fraca
Kappa ou lambda	Restrição clonal
CD10	Geralmente negativo
FMC7	Geralmente negativo

É LLC, MBL ou SLL?

Essa diferenciação é essencial para quem trabalha no laboratório.

LLC

Mais de 5.000 linfócitos/µL no sangue periférico por ≥ 3 meses, com fenótipo característico.

MBL

Quando existe população B clonal com fenótipo semelhante à LLC, mas a contagem fica abaixo de 5.000 linfócitos/µL, na ausência de linfadenopatia, organomegalia, citopenias relacionadas à doença ou sintomas, o quadro corresponde à linfocitose B monoclonal.

O consenso brasileiro subdivide ainda:

MBL de baixa contagem: < 500 linfócitos/µL
MBL de alta contagem: > 500 linfócitos/µL, mas abaixo do critério para LLC

SLL

O linfoma linfocítico de pequenas células pertence ao mesmo processo biológico da LLC, mas predomina nos linfonodos, com pouca ou nenhuma população leucêmica circulante.

É definido pela presença de linfadenopatia, ausência de citopenia provocada por infiltração medular e menos de 5.000 linfócitos/µL no sangue periférico.

Nessa situação, o diagnóstico deve, sempre que possível, ser confirmado histologicamente em linfonodo.

Medula óssea é necessária para diagnosticar LLC?

Não rotineiramente.

A biópsia de medula óssea e imunofenotipagem do aspirado medular não são recomendadas para o diagnóstico rotineiro da LLC.

Podem ser utilizadas em situações específicas, principalmente na investigação de citopenias ou quando existe dúvida diagnóstica.

LLC é, em regra, diagnosticada a partir do sangue periférico.

FISH, TP53 e IGHV não são exames para “confirmar LLC”

Testes genéticos podem ser feitos, como:

del(17p) por FISH
mutação de TP53
estado mutacional de IGHV
outras alterações citogenéticas

Eles têm importância fundamental principalmente para prognóstico e escolha terapêutica.

Mas, não são necessários para estabelecer o diagnóstico básico de uma LLC típica.

Resumo

Pergunta	Resposta
Que célula origina a LLC?	Linfócito B maduro clonal
Principal achado do hemograma	Linfocitose absoluta persistente
Critério quantitativo	≥ 5.000 linfócitos/µL
Tempo necessário	≥ 3 meses
Morfologia típica	Linfócitos pequenos e maduros, cromatina condensada
Achado clássico	Sombras de Gumprecht
Exame confirmatório	Imunofenotipagem por Citometria de fluxo
Fenótipo clássico	CD19+, CD5+, CD23+, CD200+
< 5.000 linfócitos clonais/µL	Pensar em MBL conforme contexto
Principal diferencial CD5+	Linfoma de células do manto
Medula óssea obrigatória?	Não
FISH/TP53 confirmam diagnóstico?	Não, são principalmente prognósticos/terapêuticos

Referências

HALLEK, Michael. Chronic Lymphocytic Leukemia: 2025 Update on the Epidemiology, Pathogenesis, Diagnosis, and Therapy. American Journal of Hematology, v. 100, n. 3, p. 450-480, 2025. DOI: 10.1002/ajh.27546.

CHIATTONE, Carlos Sérgio et al. Diagnosis and treatment of chronic lymphocytic leukemia: 2025 recommendations of the Brazilian Group of Chronic Lymphocytic Leukemia of the Brazilian Association of Hematology and Hemotherapy (ABHH). Hematology, Transfusion and Cell Therapy, v. 47, n. 2, 103822, 2025. DOI: 10.1016/j.htct.2025.103822.

Como identificar rouleaux em lâmina de sangue periférico

2026-10-13T05:31:24.509-03:00

O que é rouleaux

O termo rouleaux vem do francês.

Rouleau significa algo como “rolo” ou “cilindro”, e rouleaux é o plural.

Na hematologia, o nome foi adotado porque as hemácias agregadas assumem um aspecto semelhante a uma pilha de moedas ou a pequenos rolos, com as células alinhadas umas sobre as outras.

Por que rouleaux acontece

Esse arranjo ocorre quando diminui a repulsão elétrica entre as hemácias, especialmente por redução do efeito do potencial zeta.

Proteínas plasmáticas, principalmente fibrinogênio e imunoglobulinas, favorecem essa aproximação celular e a formação de rouleaux.

Algumas condições com aparecimento de rouleaux:

Infecções
Mieloma mútiplo
Macroglobulinemia de Waldenström
Câncer
Doenças inflamatórias

Como identificar rouleaux

No microscópio vemos hemácias empilhadas (uma sobre a outra) formando uma espécie de fileira.

Seu aspecto é de um monte de moedas empilhadas.

Mas, atenção! Olhar na área certa da lâmina é importante.

Faça a análise na transição entre corpo e cauda da lâmina, onde as hemácias ficam (ou ficariam) espalhadas sem se sobreporem.

Se você olhar numa área muito espessa, mais para o meio do corpo ou cabeça da lâmina, vai parecer que todo paciente tem rouleaux.

É importante saber que a formação de rouleaux é reversível e as hemácias se dispersam ao se diluir a amostra com solução salina (0,9%).

Essa é uma das formas de ajudar a diferenciar o rouleaux de uma verdadeira aglutinação mediada por anticorpos.

Atlas de imagens

Referências

Ford, J. (2013), Red blood cell morphology. Int. Jnl. Lab. Hem., 35: 351-357. https://doi.org/10.1111/ijlh.12082

Como identificar linfócitos reativos e neoplásicos - linfócitos variantes

2026-10-05T17:24:00.000-03:00

Se tem um grupo de leucócitos que gera muitas dúvidas quanto sua morfologia na distensão sanguínea de sangue periférico são as células mononucleares, monócitos e linfócitos.

Neste post eu trouxe as principais alterações na morfologia dos linfócitos e possíveis distúrbios associados a essas alterações morfológicas.

Linfócito típico

O linfócito típico é pequeno, com cromatina condensada e uma pequena quantidade de citoplasma visível de cor basofílica pálida. O núcleo de um linfócito em repouso é pouco maior que um eritrócito.

Linfócito grande e granular

São frequentemente denominados LGL (Large Granular Lymphocytes).

Esse tipo de linfócito é maior que o linfócito típico em repouso, possuindo citoplasma mais abundante, azul pálido e grânulos azurofílicos visíveis (lisossomos).

O núcleo é oval ou redondo, com cromatina condensada.

Os LGLs podem ser linfócitos T citotóxicos (CD8+) ou células NK. Sob condições normais eles correspondem a cerca de 10-15% dos linfócitos circulantes.

Podem estar aumentados em infecções virais, doenças autoimunes, após esplenectomia e na leucemia linfocítica grande granular.

Linfócitos reativos

Quando o linfócito é ativado por algum processo inflamatório e/ou infeccioso, podemos observar na lâmina modificações em sua morfologia.

Várias características são diferentes dos linfócitos típicos em repouso.

Linfócitos reativos semelhantes a imunoblastos são células grandes com razão núcleo-citoplasma elevada, cromatina condensada e citoplasma basofílico (imagem abaixo).

Outro tipo de linfócito reativo possui uma cromatina menos condensada, citoplasma abundante e azul pálido que parece estar abraçando as hemácias adjacentes.

São chamados também de células Downey do tipo II

Podem ser visto numa variedade de condições, porem estão aumentados na mononucleose infecciosa devido à infecção pelo vírus Epstein Barr (EBV).

Linfócitos neoplásicos

Estão associados e em número aumentado nas neoplasias linfoproliferativas, principalmente as crônicas, como leucemia linfocítica crônica (LLC), mieloma múltiplo e linfomas.

Na maioria dos casos, o analista clínico deve descrever a morfologia das células predominantes nas observações do hemograma, e não tentar fazer um diagnóstico.

O exame mais adequado para saber as características fenotípicas desses linfócitos, e assim classificá-los, é a imunofenotipagem por citometria de fluxo.

LLC típica

São linfócitos pequenos, com núcleo redondo, cromatina densa e citoplasma escasso.

Plasmócitos

Morfologia oval, com núcleo excêntrico e cromatina extremamente compactada.

O citoplasma é moderado e fortemente basofílico. Adjacente ao núcleo, observa-se uma área menos basofílica correspondente ao complexo de Golgi.

Não são encontrados no sangue periférico de indivíduos saudáveis.

Pode estar presente no sangue periférico devido ao mieloma múltiplo ou fenômeno reativo, após liberação de IL-6 (LMA, linfoma, carcinoma, infecção, inflamação).

Linfócito com núcleo clivado

São pequenos, com citoplasma escasso e levemente basofílico.

O núcleo apresenta uma fenda, indentação ou fissura.

Encontrado no linfoma folicular (clonal) e infecção pela bactéria Bordetella pertussis (reacional).

Inclusões citoplasmáticas

São encontradas nas Síndrome de Chediak-Higashi e Alder–Reilly.

Essas inclusões são um pouco maiores que as granulações dos LGLs.

Linfócitos vilosos

Linfócitos maduros e pequenos. O núcleo é oval, com cromatina compactada.

O citoplasma é escasso a moderado e levemente basofílico.

Possuem vilosidades em uma ou nas duas extremidades.

Encontrado no linfoma de zona marginal esplênico (LZME).

Células pilosas

São maiores que os linfócitos normais, e possuem citoplasma abundante levemente basofílico com as margens irregulares (projeções citoplasmáticas).

O núcleo pode ser oval, redondo ou bilobado e a cromatina com pouco condensação. Encontradas principalmente na tricoleucemia.

Células de Mott

São plasmócitos que possuem inclusões esféricas em seu citoplasma.

Essas inclusões são estruturas vesiculares contendo imunoglobulinas.

Podem ser encontradas na plasmocitose reativa, linfoma de Burkitt, linfoma de grandes células B, mieloma múltiplo, dentre outras condições.

Flower cells

As células possuem núcleo irregular que é convoluto, semelhante a uma flor com várias pétalas. Algumas células possuem nucléolo.

São encontradas em Linfoma/Leucemia de células T do adulto devido a infecção por HTLV-1.

Linfócitos pleomórficos

As células variam em morfologia, tamanho e razão núcleo-citoplasma.

Algumas podem ter núcleo clivado ou irregular.

A condensação da cromatina é menor que na LLC e algumas células aparentam-se com blastos.

Podem ser vistos em vários tipos de linfomas não Hodgkin, LLC (típica, mista e atípica), leucemia prolinfocítica. LLA também pode ser considerada.

Referências

Bavle RM. Bizzare plasma cell - mott cell. J Oral Maxillofac Pathol. 2013;17(1):2–3.

Bain BJ. Blood Cells - A practical guide. Blackwell, 4ª ed.

Pequeno atlas de urinálise

2026-10-03T16:19:00.000-03:00

Este atlas de urinálise foi elaborado para auxiliar na identificação dos principais elementos encontrados no sedimento urinário, reunindo imagens e descrições objetivas de células, cilindros, microrganismos e outros achados microscópicos.

O objetivo é facilitar a correlação entre morfologia, identificação laboratorial e significado clínico, servindo como material de consulta rápida para estudantes e profissionais durante o estudo e a rotina da análise microscópica da urina.

Células Epiteliais

Células epiteliais escamosas

Nas mulheres, o epitélio escamoso está localizado na base da bexiga e na uretra. Nos homens, encontra-se na porção final da uretra e no prepúcio. Além disso, essas células revestem o interior da vagina e o períneo.

A presença de uma pequena quantidade de células escamosas na urina é considerada normal, pois essas células estão constantemente sendo renovadas e substituídas.

Grandes quantidades geralmente ocorrem quando a urina entra em contato com áreas próximas, como vagina, períneo ou prepúcio, durante a coleta. Nessa situação, o achado é considerado contaminação da amostra.

Células epiteliais transicionais, ou uroteliais

As células epiteliais transicionais revestem o trato urinário desde a pelve renal até a uretra nos homens e até a região do trígono vesical nas mulheres. Essas células geralmente apresentam formato arredondado ou oval.

Células isoladas podem ser encontradas na urina normal. Quantidades maiores podem estar associadas, entre outras situações, a infecções do trato urinário ou ao uso de cateter urinário.

Células epiteliais tubulares renais (RTECs)

As células epiteliais tubulares renais, ou RTECs, Renal Tubular Epithelial Cells, formam um epitélio em monocamada que reveste o túbulo proximal, a alça de Henle, o túbulo distal, os ductos coletores e a papila renal.

A presença dessas células na urina pode indicar lesão do trato urinário superior ou lesão tubular renal, podendo estar associada a condições como infecções, necrose tubular aguda ou rejeição de transplante renal, entre outras causas.

Hemácias

A morfologia das hemácias urinárias auxilia na investigação da origem da hematúria.

Na hematúria não glomerular, predominam eritrócitos isomórficos e monomórficos.

Já na hematúria glomerular, são mais comuns eritrócitos dismórficos e polimórficos, podendo haver cilindros eritrocitários.

Achados que reforçam origem glomerular incluem mais de 40% de eritrócitos dismórficos, mais de 5% de acantócitos, presença de cilindros eritrocitários, aumento da proteinúria ou albuminúria e sinais de redução da função renal.

A interpretação deve considerar coleta adequada, processamento rápido e padronização da análise.

Leucócitos

Os leucócitos encontrados na urina são, geralmente, granulócitos.

Define-se leucocitúria como a presença de mais de 5 leucócitos por campo, em aumento de 400×.

Na maioria das vezes, a leucocitúria sugere infecção do trato urinário, especialmente quando há presença de bactérias e sintomas urinários.

Mas, granulócitos também podem ser encontrados em situações de inflamação estéril, como na glomerulonefrite.

Cristais

Leia o artigo:

Principais cristais encontrados na urina

Cilindros

Hialino: formado basicamente por uromodulina. Pode aparecer em pessoas saudáveis, especialmente após exercício, febre ou desidratação.
Granuloso: contém grânulos derivados de proteínas e degeneração celular. Geralmente está associado a lesão renal.
Hemático: contém hemácias e sugere fortemente sangramento de origem glomerular, como em glomerulonefrites.
Leucocitário: contém leucócitos e indica inflamação renal, sendo comum em pielonefrite e nefrite intersticial.
Céreo: homogêneo, refringente e de bordas bem definidas. Está relacionado a lesão renal avançada e doença renal crônica.

Bactérias

As bactérias na urina podem apresentar formato alongado, como bacilos, ou arredondado, como cocos. Uma diferenciação mais precisa apenas pela análise do sedimento urinário geralmente não é possível.

Esses microrganismos podem estar imóveis ou apresentar pequenos movimentos, semelhantes ao movimento browniano.

A presença de bactérias frequentemente ocorre acompanhada de leucócitos, caracterizando piúria.

A presença de mais de 20 bactérias por campo, em aumento de 400×, é descrita como bacteriúria.

A causa mais comum é a infecção do trato urinário.

Leveduras

Leveduras são fungos, frequentemente representados em humanos por espécies do gênero Candida, como Candida albicans.

Esses microrganismos podem estar presentes em pequenas quantidades no organismo, mas podem proliferar excessivamente quando ocorre desequilíbrio da microbiota, como após uso de antibióticos, em pessoas com imunidade reduzida ou com diabetes.

Ao microscópio, as leveduras costumam ser reconhecidas por células arredondadas ou ovais, frequentemente com brotamento, além da possível presença de hifas ou pseudohifas, que aparecem como estruturas filamentosas.

As células podem ocorrer isoladamente ou em agrupamentos, dependendo do tipo e da intensidade da infecção.

A diferenciação precisa da espécie de levedura apenas pela análise do sedimento urinário geralmente não é possível.

Muco

O muco é uma substância produzida pelo epitélio da bexiga e da uretra que, entre outras funções, ajuda na eliminação de bactérias.

A presença de uma pequena quantidade de muco na urina é considerada normal.

Quantidades aumentadas podem estar associadas, por exemplo, a infecção da bexiga.

Ao microscópio, o muco pode se assemelhar a um cilindro hialino.

Espermatozoides

Quando espermatozoides são encontrados na urina de homens, geralmente indicam ejaculação recente, embora também possam estar relacionados à ejaculação retrógrada.

Em mulheres, a presença de espermatozoides na urina é considerada uma forma de contaminação da amostra. Dependendo da idade da paciente, esse achado pode ter relevância clínica.

Em muitos laboratórios, existe uma política específica para relatar ou não a presença de espermatozoides no exame de urina.

Referências

CELLWIKI. Urine. Disponível em: CellWiki – Urine. Acesso em: 3 out. 2026.

Guia: Meios de cultura para bactérias

2026-10-01T04:45:00.000-03:00

O isolamento das bactérias é feito por meio do cultivo em meios apropriados, que fornecem os nutrientes necessários para o crescimento.

Esses meios podem ser mais simples, usados para o crescimento de diferentes tipos de bactérias, ou enriquecidos com componentes como sangue e soro, que ajudam no desenvolvimento de microrganismos mais exigentes.

Também existem os meios seletivos, que favorecem o crescimento de alguns microrganismos e dificultam o de outros.

Já os meios diferenciais permitem observar características específicas das bactérias, como mudanças de cor no meio ou diferentes tipos de hemólise.

Alguns meios conseguem ser seletivos e diferenciais ao mesmo tempo, como o MacConkey e o EMB.

Por isso, observar o crescimento, a cor, a morfologia das colônias e as alterações no meio é uma etapa importante na identificação presuntiva das bactérias.

Meios de cultura mais comuns utilizados na microbiologia laboratorial

Ágar TSA (Tryptic Soy Agar)

Classificação: meio nutritivo, de uso geral e não seletivo.

O que favorece: crescimento de uma ampla variedade de bactérias não fastidiosas e de diversos outros microrganismos.

Princípio: contém peptonas derivadas de caseína e soja, que fornecem nitrogênio, aminoácidos e peptídeos necessários ao crescimento microbiano. Também apresenta componentes que fornecem energia e mantêm o equilíbrio osmótico. Pode servir como base para meios enriquecidos, como o TSA acrescido de sangue.

Exemplos típicos:

Escherichia coli: bom crescimento
Staphylococcus aureus: bom crescimento
Pseudomonas aeruginosa: bom crescimento
Bacillus spp.: bom crescimento

Importante: o TSA não foi desenvolvido para diferenciar espécies bacterianas. A morfologia colonial pode fornecer informações preliminares, mas outros testes são necessários para a identificação.

Ágar sangue

Classificação: enriquecido e diferencial.

O que favorece: crescimento de uma ampla variedade de bactérias, inclusive muitos microrganismos com maiores exigências nutricionais.

Princípio: uma base nutritiva é enriquecida com sangue, frequentemente sangue de carneiro desfibrinado. Além de favorecer o crescimento, as hemácias permitem observar a capacidade dos microrganismos de produzir hemólise.

Como interpretar:

Alfa hemólise: lise parcial das hemácias, produzindo uma região esverdeada ou acastanhada ao redor das colônias.

Beta hemólise: lise completa das hemácias, produzindo uma zona clara e transparente ao redor das colônias.

Ausência de hemólise: não ocorre alteração perceptível das hemácias ao redor da colônia. Tradicionalmente esse padrão também é chamado de Gama hemólise, embora não corresponda propriamente a uma hemólise.

Exemplos típicos:

Streptococcus pyogenes: beta-hemólise
Streptococcus pneumoniae: alfa-hemólise
Estreptococos do grupo viridans: geralmente alfa-hemólise
Enterococcus faecalis: frequentemente ausência de hemólise
Staphylococcus aureus: algumas cepas apresentam beta-hemólise

Importante: o padrão de hemólise é uma característica importante para a identificação presuntiva, principalmente de estreptococos, mas não deve ser utilizado isoladamente para identificar uma espécie.

Ágar chocolate

Classificação: meio enriquecido e não seletivo, quando não possui antimicrobianos adicionados.

O que favorece: principalmente o crescimento de bactérias fastidiosas, ou seja, microrganismos com maiores exigências nutricionais.

Princípio: durante o preparo, o aquecimento provoca lise das hemácias e liberação de nutrientes intracelulares. Entre eles estão a hemina, conhecida como fator X, e o NAD, fator V, importantes para o crescimento de determinadas bactérias fastidiosas.

Como interpretar:

O crescimento deve ser avaliado principalmente pela presença, quantidade e morfologia das colônias.

Diferentemente do ágar sangue, o ágar chocolate não é utilizado rotineiramente para avaliar padrões de hemólise, pois as hemácias já foram lisadas durante sua preparação.

Exemplos típicos:

Haemophilus influenzae: crescimento
Neisseria gonorrhoeae: crescimento
Neisseria meningitidis: crescimento

Importante: apesar do nome, o meio não contém chocolate. A coloração marrom é produzida pelo aquecimento do sangue e pela lise das hemácias. Formulações seletivas de ágar chocolate podem conter antimicrobianos e apresentar finalidade diferente do ágar chocolate convencional.

Ágar MacConkey

Classificação: seletivo e diferencial.

O que seleciona: principalmente bacilos Gram-negativos, especialmente bactérias entéricas.

Princípio: os sais biliares e o cristal violeta inibem grande parte das bactérias Gram-positivas. A presença de lactose e do indicador vermelho neutro permite diferenciar bactérias fermentadoras de lactose das não fermentadoras.

Como interpretar:

Lactose positiva: colônias rosadas ou avermelhadas.

Lactose negativa: colônias incolores, claras ou pálidas.

Alguns fermentadores intensos podem apresentar precipitação de sais biliares ao redor das colônias.

Exemplos típicos:

Escherichia coli: lactose positiva, geralmente colônias rosadas a avermelhadas
Klebsiella pneumoniae: lactose positiva, frequentemente com aspecto mucoide
Salmonella spp.: lactose negativa
Shigella spp.: lactose negativa
Pseudomonas aeruginosa: lactose negativa

Importante: A coloração da colônia fornece identificação presuntiva, não identificação definitiva.

Ágar EMB (Eosin-methylene Blue)

Classificação: diferencial, com efeito seletivo sobre parte da microbiota Gram-positiva.

O que seleciona: favorece principalmente o crescimento de bactérias Gram-negativas entéricas, enquanto os corantes eosina e azul de metileno dificultam o crescimento de muitas bactérias Gram-positivas.

Princípio: a fermentação da lactose provoca produção de ácidos e redução do pH. A acidificação modifica a interação das colônias com os corantes do meio, produzindo diferentes padrões de coloração.

Como interpretar:

Fermentação intensa da lactose: colônias escuras, podendo apresentar brilho metálico.

Fermentação da lactose: colônias roxas ou escuras.

Não fermentação: colônias geralmente incolores ou pouco pigmentadas.

Exemplos típicos:

Escherichia coli: frequentemente apresenta colônias escuras com brilho metálico esverdeado
Enterobacter spp.: fermentador de lactose, geralmente com colônias rosadas a arroxeadas
Klebsiella spp.: fermentador de lactose
Salmonella spp.: lactose negativa
Shigella spp.: lactose negativa

Importante: o brilho metálico esverdeado é bastante característico de muitas cepas de E. coli, mas não deve ser utilizado isoladamente para estabelecer a identificação da espécie.

Ágar Sal Manitol

Classificação: seletivo e diferencial.

O que seleciona: principalmente bactérias tolerantes a altas concentrações de sal, com destaque para os estafilococos.

Princípio: contém aproximadamente 7,5% de cloreto de sódio, concentração capaz de inibir o crescimento de muitas bactérias. O manitol funciona como carboidrato fermentável e o vermelho de fenol como indicador de pH. Quando ocorre fermentação do manitol, há produção de ácidos e o meio passa de vermelho ou rosado para amarelo.

Como interpretar:

Manitol positivo: crescimento acompanhado de coloração amarela do meio ao redor das colônias.

Manitol negativo: ocorre crescimento, mas o meio permanece rosado ou avermelhado.

Ausência de crescimento: microrganismo provavelmente não tolerou a elevada concentração de NaCl nas condições utilizadas.

Exemplos típicos:

Staphylococcus aureus: geralmente manitol positivo, com colônias e halo amarelos
Staphylococcus epidermidis: geralmente manitol negativo, sem amarelecimento do meio

Importante: crescimento associado à fermentação do manitol pode sugerir S. aureus, mas o resultado deve ser considerado presuntivo. A identificação deve ser confirmada por outros métodos.

Ágar CLED

Classificação: meio diferencial, não seletivo e deficiente em eletrólitos.

O que favorece: o crescimento dos principais microrganismos associados às infecções do trato urinário, sendo especialmente utilizado em uroculturas.

Princípio: o CLED, sigla para Cystine Lactose Electrolyte Deficient, contém lactose como carboidrato fermentável e azul de bromotimol como indicador de pH. A fermentação da lactose produz ácidos e modifica a cor do meio. A L-cistina favorece o crescimento de alguns coliformes dependentes desse aminoácido. A baixa concentração de eletrólitos restringe a disseminação característica de Proteus spp. pela superfície do ágar.

Como interpretar:

Fermentadores de lactose: produzem acidificação do meio, formando colônias e/ou região ao redor com tonalidade amarela.

Não fermentadores de lactose: geralmente apresentam colônias azuladas, azul-esverdeadas ou translúcidas, mantendo o meio com tonalidade verde ou azul.

Proteus spp.: consegue crescer, mas apresenta redução ou ausência do swarming ("véu") devido à deficiência de eletrólitos do meio.

Exemplos típicos:

Escherichia coli: colônias amarelas, geralmente opacas
Klebsiella spp.: fermentadoras de lactose, com colônias geralmente amarelas e frequentemente mucoides
Proteus spp.: colônias translúcidas a azuladas, sem o espalhamento típico observado em outros meios
Pseudomonas aeruginosa: não fermentadora de lactose, geralmente com colônias azul-esverdeadas
Staphylococcus spp.: podem crescer e algumas espécies podem apresentar colônias amarelas.

Importante: o CLED é particularmente útil na bacteriologia urinária porque permite, na mesma placa, crescimento, contagem de colônias e diferenciação presuntiva dos microrganismos de acordo com a fermentação da lactose, além de controlar o swarming de Proteus. A aparência das colônias, entretanto, não deve ser utilizada isoladamente para identificação definitiva da espécie.

Ágar Hektoen

Classificação: seletivo e diferencial.

O que seleciona: principalmente enterobactérias, sendo especialmente utilizado para auxiliar no isolamento de Salmonella e Shigella em amostras entéricas.

Princípio: sais biliares e outros componentes reduzem o crescimento de grande parte das bactérias Gram-positivas e de parte da microbiota intestinal acompanhante. O meio contém lactose, sacarose e salicina para avaliação da fermentação de carboidratos. Tiossulfato e citrato férrico permitem detectar a produção de sulfeto de hidrogênio, H₂S.

Como interpretar:

Fermentadores dos carboidratos: colônias geralmente salmão, rosadas ou alaranjadas.

Não fermentadores: colônias verdes ou azul-esverdeadas.

H₂S positivo: formação de precipitado negro, geralmente observado no centro da colônia.

Exemplos típicos:

Salmonella spp.: colônias azul-esverdeadas, frequentemente com centro negro
Shigella spp.: colônias verdes, geralmente sem centro negro
Escherichia coli: geralmente salmão a alaranjada
Outros coliformes fermentadores: colônias salmão ou alaranjadas

Importante: no Hektoen não é adequado resumir a interpretação apenas como "fermentador ou não fermentador de lactose". O meio contém três carboidratos: lactose, sacarose e salicina, além do sistema para identificação de produção de H₂S.

Resumo em tabela

Meio de cultura	Classificação	Principal característica / interpretação
Ágar TSA	Nutritivo e não seletivo	Permite o crescimento de ampla variedade de bactérias não fastidiosas. Usado como meio de cultivo geral.
Ágar sangue	Enriquecido e diferencial	Favorece o crescimento de diversas bactérias e permite avaliar hemólise alfa, beta ou ausência de hemólise.
Ágar chocolate	Enriquecido	Indicado para bactérias fastidiosas, como Haemophilus e Neisseria. As hemácias são lisadas durante o preparo.
Ágar MacConkey	Seletivo e diferencial	Favorece bacilos Gram-negativos. Fermentadores de lactose formam colônias rosadas; não fermentadores ficam incolores ou pálidos.
Ágar EMB	Seletivo e diferencial	Diferencia principalmente bactérias Gram-negativas pela fermentação da lactose. E. coli pode apresentar brilho metálico esverdeado.
Ágar manitol salgado	Seletivo e diferencial	Favorece bactérias halotolerantes, especialmente estafilococos. A fermentação do manitol provoca mudança do meio para amarelo.
Ágar Hektoen	Seletivo e diferencial	Utilizado principalmente para isolamento de Salmonella e Shigella. Produção de H₂S pode formar centro negro.
Ágar CLED	Diferencial e deficiente em eletrólitos	Muito utilizado em urocultura. Diferencia fermentadores de lactose e reduz o swarming de Proteus spp.

Referências

BRASIL. Agência Nacional de Vigilância Sanitária. Microbiologia clínica para o controle de infecção relacionada à assistência à saúde: módulo 5: tecnologias em serviços de saúde: descrição dos meios de cultura empregados nos exames microbiológicos. Brasília, DF: Anvisa, 2013. 95 p.

MICHIGAN STATE UNIVERSITY. Cultivation Media for Bacteria. Virtual Interactive Bacteriology Laboratory. East Lansing: Michigan State University, [s.d.]. Disponível em: https://learn.chm.msu.edu/vibl/content/differential/index.html. Acesso em: 1 out. 2026.

3 vagas para Biomédico nas Residências da SES-GO (2027)

2026-09-30T05:00:01.656-03:00

A Secretaria de Estado da Saúde de Goiás publicou o processo seletivo unificado para as residências multiprofissionais e uniprofissionais, com ingresso em 2027.

Para biomédicos, são 3 vagas distribuídas em dois programas de residência multiprofissional.

A seleção é executada pelo Instituto Verbena da UFG. O ponto que merece atenção nesta edição é a abertura de uma nova área para a Biomedicina: Hematologia e Hemoterapia - Ênfase em Adulto, sediada na Rede HEMO do Estado de Goiás, o HEMOGO.

Nova área no hemocentro

A novidade do edital é a residência na Rede HEMO do Estado de Goiás. O programa multiprofissional tem área de concentração em Hematologia e Hemoterapia - Ênfase em Adulto e oferece 1 vaga para Biomedicina.

É uma oportunidade especialmente relevante para quem busca formação em hemoterapia, hematologia e atuação em uma rede estadual de serviços hemoterápicos.

Vagas para Biomedicina

Unidade de saúde	Área de concentração	Vagas
HDT e LACEN-GO	Infectologia	2
HEMOGO	Hematologia e Hemoterapia Ênfase em Adulto	1

No programa de Infectologia, conduzido pelo Hospital Estadual de Doenças Tropicais Dr. Anuar Auad em parceria com o LACEN-GO, há 2 vagas para biomédicos: 1 em ampla concorrência e 1 reservada para candidatos negros.

Duração carga horária e bolsa

Duração de 2 anos com carga horária total de 5.760 horas.

Carga horária 60 horas semanais, com 80% de atividades práticas e teórico-práticas e 20% de atividades teóricas.

Regime tempo integral e dedicação exclusiva, sem exercício de outra atividade profissional remunerada durante a residência.

Bolsa de R$ 4.106,09 mensais, sujeita aos descontos tributários e previdenciários previstos em lei.

Requisitos

Podem participar profissionais graduados em Biomedicina.

Para a matrícula, a graduação deve estar concluída, com colação de grau prevista até 28 de fevereiro de 2027.

Também será exigido registro profissional regular na jurisdição de Goiás.

Processo seletivo

A seleção terá prova objetiva, de caráter eliminatório e classificatório, e análise curricular, de caráter classificatório. A pontuação final será calculada com peso 8 para a prova objetiva e peso 2 para o currículo.

A prova objetiva será realizada em Goiânia, no período vespertino, terá duração de 4 horas e contará com 50 questões.

Serão 20 questões de Saúde Pública, valendo 40 pontos, e 30 de conhecimentos específicos de Biomedicina, valendo 60 pontos.

É necessário obter pelo menos 50 pontos para não ser eliminado.

O que estudar para Biomedicina

O edital detalha os conteúdos de Saúde Pública e de Biomedicina.

No bloco comum, a preparação deve incluir SUS, redes de atenção, atenção primária, políticas nacionais de saúde, epidemiologia, indicadores, testes diagnósticos e planejamento em saúde.

Nos conhecimentos específicos, o foco é ética profissional, hematologia, microbiologia, imunologia, parasitologia, bioquímica, líquidos corporais, doenças endócrinas, marcadores tumorais, biossegurança, gestão da qualidade no laboratório clínico, biologia molecular e interpretação clínica de exames.

Prepare-se para a prova dessa residência com meu curso preparatório de análises clínicas. Clique aqui.

Inscrições

As inscrições ocorrem exclusivamente no Portal do Candidato do Instituto Verbena da UFG, de 5 de outubro a 3 de novembro de 2026, até as 17 horas no último dia.

A taxa é de R$ 250,00 e o boleto deve ser pago até 3 de novembro de 2026.

Datas para anotar

Inscrições 5 de outubro a 3 de novembro de 2026.
Prova objetiva 29 de novembro de 2026, em Goiânia.
Upload do currículo 21 a 29 de dezembro de 2026.
Resultado final 15 de fevereiro de 2027.
Início da residência 1 de março de 2027.

Onde acompanhar

Todas as informações complementares, comunicados, resultados e chamadas para matrícula serão divulgados pelo Instituto Verbena da UFG, em www.institutoverbena.ufg.br.

4 vagas para Biomédico nas Residências do HC-UFG (2026)

2026-09-30T04:44:15.300-03:00

A Universidade Federal de Goiás publicou o processo seletivo das residências multiprofissionais e em área profissional da saúde para 2027. Para biomédicos, o Hospital das Clínicas da UFG oferece 4 vagas em duas áreas de concentração.

As oportunidades estão distribuídas entre Hematologia e Hemoterapia e Urgência e Emergência. A seleção é conduzida pelas comissões de residência da UFG e da UFJ, com execução do Instituto Verbena da UFG.

Áreas de concentração

A residência em Hematologia e Hemoterapia é uma oportunidade diretamente relacionada à rotina de laboratório, ao cuidado de pacientes hematológicos e às práticas de hemoterapia.

Já a área de Urgência e Emergência amplia a possibilidade de atuação do biomédico dentro da assistência hospitalar, em uma formação multiprofissional.

Vagas para Biomedicina

Unidade de saúde	Área de concentração	Vagas
HC-UFG	Hematologia e Hemoterapia	2
HC-UFG	Urgência e Emergência	2

Requisitos

É necessário possuir graduação em Biomedicina reconhecida pelo MEC ou documento que comprove a colação de grau antes do início do programa.

O registro no Conselho Regional de Biomedicina deve estar regular para o exercício profissional em Goiás até o primeiro dia das atividades da residência.

Duração e bolsa

Duração de 2 anos com carga horária total de 5.760 horas.

Carga horária 60 horas semanais, com 80 por cento de atividades práticas e teórico-práticas e 20 por cento de atividades teóricas.

Regime tempo integral e dedicação exclusiva, sem exercício de outra atividade profissional remunerada durante a residência.

Bolsa de R$ 4.106,09 mensais, sujeita aos descontos tributários e previdenciários previstos em lei.

Processo seletivo

A seleção terá prova objetiva, eliminatória e classificatória, e análise curricular, classificatória.

A nota final será calculada com peso 8 para a prova objetiva e peso 2 para a análise do currículo.

A prova objetiva terá 50 questões, todas de múltipla escolha com quatro alternativas, duração de 4 horas e aplicação no período vespertino em Goiânia.

Serão 10 questões de Saúde Pública e 40 de conhecimentos específicos.

Para seguir no processo, o candidato precisa alcançar pelo menos 50 pontos.

O que estudar para Biomedicina

O bloco de Saúde Pública inclui SUS, redes de atenção, políticas nacionais de saúde, atenção primária, vigilância em saúde, epidemiologia, planejamento, regulação e indicadores de saúde.

Nos conhecimentos específicos, o edital lista ética profissional, hematologia e hemoterapia, microbiologia, imunologia, parasitologia, bioquímica, líquidos corporais, doenças endócrinas, marcadores tumorais, biossegurança e gestão da qualidade no laboratório clínico.

Prepare-se para a prova dessa residência com meu curso preparatório de análises clínicas. Clique aqui.

Inscrições

As inscrições devem ser realizadas no Portal do Candidato do Instituto Verbena da UFG, de 30 de setembro a 26 de outubro de 2026, até as 17 horas no último dia.

A taxa é de R$ 250,00 e o pagamento deve ser efetuado até 26 de outubro de 2026.

Datas para anotar

Inscrições 30 de setembro a 26 de outubro de 2026.
Prova objetiva 6 de dezembro de 2026, em Goiânia.
Upload do currículo 30 de dezembro de 2026 a 5 de janeiro de 2027.
Resultado final 16 de fevereiro de 2027.
Início da residência 1 de março de 2027.

Onde acompanhar

Editais, comunicados, resultados e chamadas para matrícula serão divulgados pelo Instituto Verbena da UFG em www.institutoverbena.ufg.br.

Caso #01 | Anemia grave com reticulócitos elevados: a medula está respondendo?

2026-09-24T05:21:00.516-03:00

No caso clínico a seguir vamos focar na interpretação e correção dos reticulócitos.

Caso clínico

Paciente do sexo masculino, 34 anos, procura atendimento por cansaço intenso, palpitações e dispneia aos esforços há aproximadamente uma semana.

Relata que, alguns dias antes, percebeu urina mais escura que o habitual. Nega sangramento aparente.

Ao exame físico, apresenta palidez cutaneomucosa e discreta icterícia.

O médico solicita hemograma, contagem de reticulócitos e exames complementares.

Parâmetro	Resultado	Referência
Hemoglobina	6,2 g/dL ↓	13,0–17,0 g/dL
Hematócrito	19% ↓	40–50%
VCM	92 fL	80–100 fL
HCM	30 pg	27-32 pg
Leucócitos	8.900/µL	4.000-11.000/µL
Plaquetas	278.000/µL	150.000-450.000/µL
Reticulócitos	8% ↑	0,5–2,5%

↑ Resultado aumentado; ↓ resultado diminuído. Os intervalos de referência podem variar conforme método, equipamento, laboratório e população avaliada.

Podemos verificar, então, que o paciente tem uma anemia grave que é normocítica e normocrômica (VCM e HCM normais) com uma reticulocitose (reticulócitos ↑).

Hora do Quiz!

Um paciente apresenta Hb de 6,2 g/dL, hematócrito de 19% e reticulócitos de 8%. A resposta medular é adequada porque os reticulócitos estão acima de 2,5%.

Em um indivíduo sem anemia, aproximadamente 1 a 2% das hemácias circulantes são reticulócitos (hemácias jovens recém saídas da medula óssea).

Geralmente, a contagem de reticulócitos é usada para verificar se a medula óssea está hipo ou hipercelular.

Mas, o resultado é relativo (%) e vai variar de acordo com a quantidade de hemácias do paciente.

Então, um paciente pode ter 8% de reticulócitos mas 1,5 milhões de hemácias.

Por isso, para uma intepretação mais fidedigna é importante realizar a correção de reticulócitos.

Como corrigir a contagem de reticulócitos

A fórmula é a seguinte:

Reticulócitos corrigidos (%) = reticulócitos (%) × Ht do paciente / Ht de referência

Calculadora de reticulócitos corrigidos

Reticulócitos corrigidos (%) = Reticulócitos (%) × Ht do paciente (%) ÷ Ht de referência (%)

Reticulócitos (%)

Hematócrito do paciente (%)

Hematócrito de referência (%)

Reticulócitos corrigidos

Ferramenta destinada a fins educacionais.

No exemplo do nosso caso, a contagem de leucócitos corrigida, considerando o hematócrito do paciente, deu 3,4%.

Ou seja, ainda existe um aumento. Porém, menos expressivo do que o resultado sem correção.

E ainda falta uma correção importante!

Quando a medula óssea está hiper estimulada acaba liberando reticulócitos mais imaturos no sangue periférico.

Em condições normais, o reticulócito completa sua maturação no sangue em aproximadamente um dia.

Na anemia grave, entretanto, células mais imaturas podem permanecer como reticulócitos circulantes por mais tempo.

Então, para contornar esse problema, temos que considerar o tempo de maturação dos reticulócitos na hora da interpretação.

Para isso é usado o Índice de Produção de Reticulócitos (RPI, do inglês Reticulocyte Production Index).

Como calcular o Índice de Produção de Reticulócitos (RPI)

A fórmula é a seguinte:

RPI = reticulócitos corrigidos (%) ÷ fator de maturação

Os fatores de maturação variam de acordo com a referência.

Uma forma tradicional, derivada do modelo de Hillman para adultos, é:

Hematócrito	Fator de maturação
≥ 40%	1,0
30 a 39,9%	1,5
20 a 29,9%	2,0
<20%	2,5

Utilizando essa referência, calculamos o RPI do paciente com o fator de maturação de 2,5.

RPI = 3,4% ÷ 2,5

RPI = 1,36

A interpretação clássica é a seguinte:

RPI abaixo de 2: Resposta eritropoietica inadequada ou insuficiente para o grau de anemia

RPI entre 2 e 3: Zona intermediária, interpretar com cautela e contexto clínico

RPI acima de 3: Resposta eritropoietica aumentada, compatível com resposta medular apropriada à anemia

Conclusão do caso

No caso encontramos o seguinte:

Hb = 6,2 g/dL
Ht = 19%
Reticulócitos = 8%
Reticulócitos corrigidos = 3,4%
RPI = 1,36

Os 8% de reticulócitos parecem impressionantes, mas, depois de considerar a gravidade da anemia e a maturação prolongada dos reticulócitos, a resposta medular é menor do que a porcentagem inicial sugere.

As causas da anemia normo normo poderiam ser:

Hemólise muito recente
Deficiência concomitante de ferro, folato ou vitamina B12
Doença renal
Doença inflamatória

Referências

Rodak's Hematology: Clinical Principles and Applications; Wintrobe's Clinical Hematology; Dacie and Lewis Practical Haematology.

Hillman RS. Characteristics of marrow production and reticulocyte maturation in normal man in response to anemia. J Clin Invest. 1969;48(3):443-453.

Quando Revisar a Lâmina no Hemograma? Critérios e Flags

2026-09-18T04:29:23.058-03:00

Definir critérios para revisão de lâminas hematológicas ajuda o laboratório a reconhecer alterações que exigem avaliação microscópica, investigar resultados potencialmente incorretos e manter uma conduta padronizada entre os microscopistas.

Mas, atenção! Esses critérios devem ser validados para o analisador utilizado no seu laboratório e também para o tipo da população atendida (adulta, pediátrica, internada, ambulatorial etc.).

A seguir você encontra recomendações gerais que podem ser usadas como base para que seu laboratório possa adaptar de acordo com a sua rotina.

🎯 Condutas

Revisar lâmina

O que fazer Examinar o esfregaço e registrar os achados relevantes.

Fazer diferencial manual

O que fazer Examinar o esfregaço e registrar os achados relevantes.

Investigar antes de liberar

O que fazer Conferir amostra, histórico, gráficos do equipamento e possíveis interferências. Repetir ou usar método alternativo conforme o caso.

Menu de navegação:

🔴 Eritrograma

Critério: Hemoglobina muito baixa ou alta

Resultado Hb < 7 g/dL ou > 2 g/dL acima do limite superior para idade e sexo, na primeira ocorrência.

Conduta Revisar a lâmina e conferir a integridade da amostra.

Critério: Microcitose ou macrocitose acentuada

Resultado VCM < 75 fL ou > 105 fL em adulto, na primeira ocorrência.

Conduta Revisar a morfologia eritrocitária e considerar o tempo de armazenamento da amostra.

Critério: Anisocitose acentuada

Resultado RDW > 22%, na primeira ocorrência.

Conduta Revisar a lâmina.

Critério: Suspeita de fragmentação

Resultado Flag de esquizócitos

Conduta Revisar com prioridade e avaliar a presença de esquizócitos.

🟣 Leucograma

As contagens absolutas abaixo estão expressas por µL (mm³).

Critério: Leucopenia ou leucocitose acentuada

Resultado Leucócitos < 4.000 ou > 30.000, na primeira ocorrência.

Conduta Revisar a lâmina.

Critério: Neutropenia ou neutrofilia acentuada

Resultado Neutrófilos < 1.000 ou > 20.000, na primeira ocorrência.

Conduta Revisar a lâmina e fazer diferencial manual.

Critério: Lifocitose

Resultado Linfócitos > 5.000 em adultos ou > 7.000 em menores de 12 anos, na primeira ocorrência.

Conduta Revisar morfologia linfocitária.

Critério: Monocitose

Resultado Monócitos > 1.500 em adultos ou > 3.000 em menores de 12 anos, na primeira ocorrência.

Conduta Revisar a lâmina.

Critério: Eosinofilia ou basofilia acentuada

Resultado Eosinófilos > 2.000 ou basófilos > 500, na primeira ocorrência.

Conduta Revisar a lâmina.

Critério: Diferencial ausente ou não confiável

Resultado Equipamento não forneceu diferencial válido.

Conduta Revisar a lâmina e fazer diferencial manual.

Critério: Suspeita de blastos

Resultado Flag de blastos

Conduta Revisar a lâmina com prioridade e fazer diferencial manual.

Critério: Suspeita de linfócitos atípicos ou anômalos

Resultado Flag de linfócitos atípicos

Conduta Revisar a lâmina e fazer diferencial manual, se necessário.

Critério: Granulócitos imaturos

Resultado Flag de granulócitos imaturos (IG)

Conduta Revisar a lâmina e fazer diferencial manual.

Critério: Presença de eritroblastos

Resultado Flag de NRBC

Conduta Revisar lâmina; confirmar o achado e verificar se a contagem de leucócitos precisa de correção.

🟠 Plaquetograma

Critério: Trombocitopenia ou trombocitose acentuada

Resultado Plaquetas < 100.000/µL ou > 1.000.000/µL, na primeira ocorrência.

Conduta Revisar a lâmina e conferir a estimativa plaquetária.

Critério: Mudança inesperada da contagem

Resultado Falha no delta check de plaquetas.

Conduta Revisar a lâmina e investigar a causa da variação.

Critério: Suspeita de agregados

Resultado Flag de agregados plaquetários

Conduta Verificar coágulos na amostra e examinar a lâmina, inclusive bordas e cauda do esfregaço.

Regras gerais

Primeira amostra de recém-nascido: revisar a lâmina. Criar limites pediátricos próprios para as demais situações.

Resultado fora da faixa analítica, parâmetro não liberado pelo equipamento ou suspeita de coágulo: resolver primeiro a confiabilidade da contagem. A lâmina pode ajudar na investigação, mas não substitui repetição, diluição ou método alternativo quando necessários.

Alteração previamente confirmada: usar histórico e delta check validados para decidir se é necessária nova revisão. Isso não dispensa a investigação de um novo flag suspeito ou de uma mudança clínica relevante.

Morfologia digital: pode apoiar a triagem e a pré-classificação, desde que o fluxo seja validado e a interpretação de células suspeitas permaneça sob responsabilidade de profissional habilitado.

Referências

BARNES, P. W.; MCFADDEN, S. L.; MACHIN, S. J.; SIMSON, E. The International Consensus Group for Hematology Review: suggested criteria for action following automated CBC and WBC differential analysis. Laboratory Hematology, v. 11, n. 2, p. 83-90, 2005.

COURVILLE, E. L. et al. Performance of automated hematology analyzer criteria in detecting peripheral blood smear abnormalities: a systematic literature review. International Journal of Laboratory Hematology, v. 48, n. 5, p. 1008-1022, 2026. DOI: 10.1111/ijlh.70139.

CLINICAL AND LABORATORY STANDARDS INSTITUTE (CLSI). Reference leukocyte differential count (proportional) and evaluation of instrumental methods. 3. ed. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute, 2026. (CLSI H20). ISBN 978-1-68440-318-9.

PALMER, L.; BRIGGS, C.; MCFADDEN, S.; ZINI, G.; BURTHEM, J.; ROZENBERG, G.; PROYTCHEVA, M.; MACHIN, S. J. ICSH recommendations for the standardization of nomenclature and grading of peripheral blood cell morphological features. International Journal of Laboratory Hematology, v. 37, n. 3, p. 287-303, 2015. DOI: 10.1111/ijlh.12327.

KRATZ, A.; LEE, S.-H.; ZINI, G.; RIEDL, J. A.; HUR, M.; MACHIN, S. Digital morphology analyzers in hematology: ICSH review and recommendations. International Journal of Laboratory Hematology, v. 41, n. 4, p. 437-447, 2019. DOI: 10.1111/ijlh.13042.

Como implantar a comunicação de resultados críticos no laboratório clínico

2026-09-16T05:28:44.751-03:00

Os resultados de exames laboratoriais apoiam a decisão clínica na maioria das intervenções médicas.

Então, quando um resultado crítico (de alto risco) é detectado no laboratório, é extremamente importante que o médico e/ou paciente seja alertado para que as medidas apropriadas sejam tomadas.

Em 2008, a OMS publicou um relatório identificando o acompanhamento inadequado dos resultados de exames como a principal causa de danos aos pacientes.

Nas últimas décadas, várias organizações e agências reguladoras, como Anvisa, CLSI e ISO, começaram a colocar a comunicação de resultados críticos no laboratório como um item obrigatório.

No Brasil, a RDC Anvisa nº 978 de 2025, que regulamenta os laboratórios clínicos, traz em seu artigo 154, item III, isso explicitamente:

"definir limites de risco, valores críticos ou de alerta, para os exames com resultados que necessitem tomada imediata de decisão, bem como devem definir fluxo de comunicação ao profissional de saúde responsável ou ao paciente, quando houver necessidade de decisão imediata;"

Então, se no seu laboratório essa comunicação de resultados críticos ainda não é feita, ou registrada, saiba que isso é uma irregularidade.

O que o laboratório precisa fazer:

1. Definir uma lista de exames e resultados críticos

A lista deve conter:

Os nomes dos exames;
Os valores de alerta (mínimo e/ou máximo) com a unidade de medida;
O prazo para notificação.

Essa lista deve ser criada conjuntamente com representantes da equipe médica.

No Brasil, o PNCQ disponibiliza uma lista que você pode usar como base para criar a do seu laboratório.

Quando necessário, listas separadas podem ser criadas para grupos de pacientes específicos (ex.: adultos x pediátricos, internados x ambulatoriais etc.).

O laboratório também deve definir em que situações um resultado crítico não será comunicado.

Por exemplo:

um resultado similar já foi obtido anteriormente no mesmo paciente recentemente;
o resultado já é esperado devido ao diagnóstico do paciente.

Todos os profissionais do laboratório devem ter acesso direto e rápido a essa lista de resultados críticos.

2. Ter protocolos para que os resultados críticos sejam identificados

Isso inclui um sistema de alerta para informar aos profissionais do laboratório quando um resultado crítico foi gerado.

Esse sistema deve ser capaz de distinguir resultados críticos dos outros resultados.

É importante que o laboratório consiga identificar possíveis erros analíticos para comunicar somente resultados válidos.

Se necessário, resultados preliminares podem ser comunicados, desde que seja informado que ainda serão confirmados por repetição ou nova amostra.

3. Especificar os meios de comunicação dos resultados

Meios verbais e não verbais que permitam a notificação imediata e a confirmação do recebimento.

Comunicações verbais, como telefonemas, devem ser feitas por profissionais treinados e competentes.

Meios de comunicação não verbal também são aceitos, desde que sejam seguros e confiáveis.

4. Definir quais serão os dados comunicados ao receptor dos resultados

A informação comunicada deve incluir:

Identificação de quem está notificando
Identificação do paciente
Data e hora em que a amostra foi coletada
Exame realizado
Resultado do exame

Em comunicações verbais é importante que o notificador garanta que a informação foi entendida corretamente (read-back).

5. Garantir que todas as comunicações sejam documentadas

É extremamente importante que o laboratório mantenha registros de todas as comunicações (ou tentativas) em sistema próprio.

Os registros devem conter:

Data e hora da comunicação
Identificação do notificador
Identificação do paciente
Exame realizado
Resultado do exame, com unidade de medida
Identificação de quem recebeu a notificação
Data e hora da confirmação do recebimento da notificação

Qualquer dificuldade na comunicação deve ser registrada também.

6. Definir e analisar indicadores relacionados à comunicação de resultados críticos

O documento com os procedimentos de comunicação de resultados críticos (POP, manual, programa, instrução etc.) e as listas de exames devem ser revisados periodicamente (ex.: a cada 2 anos).

Indicadores de qualidade devem ser usados para monitorar o desempenho do laboratório na comunicação desses resultados.

Exemplos são a porcentagem de resultados que foram comunicados com sucesso e o tempo entre obtenção e comunicação do resultado.

Referências

Brasil. Ministério da Saúde. Anvisa. RDC 978/2025 - Dispõe sobre o funcionamento de Serviços que executam as atividades relacionadas aos Exames de Análises Clínicas (EAC).

PNCQ. Valores críticos de exames laboratoriais que necessitam de Imediata tomada de decisão. Atualização: agosto/2025.

The Royal College of Pathologists of Australasia (RCPA); Australasian Association for Clinical Biochemistry and Laboratory Medicine (AACB). Management and communication of high risk laboratory results. Guideline n. 1/2015. Sydney: RCPA; AACB, 2023.

3 vagas para Biomédico na Residência do HCFMUSP (2027)

2026-09-04T04:55:39.154-03:00

O Hospital das Clínicas da Faculdade de Medicina da Universidade de São Paulo (HCFMUSP) abriu processo seletivo para os Programas de Residência Multiprofissional e em Área Profissional da Saúde com início em 2027.

Para biomédicos, são 3 vagas na área de Biomedicina Translacional, dentro da Residência Multiprofissional em Atenção Oncológica ao Adulto.

A seleção será realizada pela Fundação Vunesp. O programa tem duração de dois anos, exige dedicação exclusiva e combina atividades teóricas e práticas em serviço.

Área de concentração

Biomedicina Translacional na Residência Multiprofissional em Atenção Oncológica ao Adulto.

Vagas

3 vagas para Biomédico.

Requisitos

Bacharelado em Biomedicina concluído até dezembro de 2026.
Diploma reconhecido pelo MEC.
Registro no Conselho Regional de Biomedicina, a ser apresentado no momento da matrícula.
Disponibilidade para cumprir o programa em regime de dedicação exclusiva.

Duração e carga horária

A residência terá duração de 24 meses, jornada de 60 horas semanais, incluindo plantões, e carga horária total mínima de 5.760 horas. O início está previsto para o primeiro dia útil de março de 2027.

Bolsa

A bolsa mensal prevista é de R$ 4.106,09. O valor poderá sofrer descontos tributários e previdenciários, conforme a legislação.

Processo seletivo

A seleção terá duas provas aplicadas no mesmo período, em 22 de novembro de 2026, pela manhã, na cidade de São Paulo. O local e o horário serão divulgados posteriormente pela Vunesp.

Prova objetiva, eliminatória e classificatória, com 30 questões de múltipla escolha e cinco alternativas por questão.
Prova dissertativa, classificatória, composta por uma situação problema relacionada à área profissional.

Duração total das provas: 4 horas. Para seguir no processo, o candidato precisa obter pelo menos 50 pontos na prova objetiva.

O que estudar para Biomedicina

O edital informa que a prova objetiva cobrará conhecimentos equivalentes aos conteúdos da graduação em Biomedicina. Não há indicação de referências bibliográficas.

Prepare-se para a prova dessa residência com meu curso preparatório de análises clínicas. Clique aqui.

A prova dissertativa avaliará o conhecimento e a capacidade de propor condutas diante de uma situação problema da área profissional.

Inscrições

As inscrições devem ser feitas exclusivamente no site da Vunesp, das 10h de 3 de setembro de 2026 até 23h59 de 19 de outubro de 2026. A taxa de inscrição é de R$ 330,00, com vencimento do boleto em 20 de outubro de 2026.

Acompanhe editais, comunicados e resultados nos sites da Vunesp e do HCX Fmusp: https://www.vunesp.com.br/FMHC2601

Pequeno atlas de Parasitologia

2026-09-01T20:38:00.000-03:00

A identificação correta das estruturas parasitárias é uma etapa essencial na rotina do laboratório clínico e exige atenção aos detalhes morfológicos observados ao microscópio.

Este pequeno atlas de parasitologia foi elaborado como material de consulta rápida para estudantes e profissionais, reunindo imagens e características importantes de protozoários, helmintos, ovos, larvas e outras estruturas encontradas no diagnóstico parasitológico.

A proposta é facilitar a revisão da morfologia e auxiliar no reconhecimento das principais formas parasitárias observadas nas amostras clínicas.

Ovo de Taenia spp.

Ovo de Hymenolepis diminuta

Macho adulto de Enterobius vermicularis

Adultos de Trichuris trichiura

Ovo de Trichuris trichiura

Ovo de Ancilostomídeo

Adulto de Ascaris lumbricoides

Ovo fértil de Ascaris lumbricoides

Ovo de Schistosoma mansoni

Adultos de Schistosoma mansoni

Cisto de Entamoeba coli

Cisto de Entamoeba histolytica

Trofozoíto de Giardia lamblia

Tripomastigota de Trypanosoma cruzi

Trofozoíto de Plasmodium sp.

Adulto de Fasciola hepatica

Referência

DPDx (Laboratory Identification of Parasites of Public Health Concern), CDC.

12 vagas para Biomédico no Concurso Público da SES-TO 2026

2026-08-24T05:29:01.456-03:00

Foi publicado o edital do concurso público da Secretaria de Estado da Saúde do Tocantins (SES-TO). Para biomédicos, são 12 vagas para Palmas, sendo 8 para ampla concorrência e 4 destinadas às modalidades de reserva previstas no edital.

A seleção será conduzida pela Fundação Getúlio Vargas (FGV) e contará com prova objetiva de caráter eliminatório e classificatório. O concurso oferece vagas em diferentes localidades do estado e prevê provimento de 5.124 vagas em seu conjunto.

Vagas

A oportunidade para Biomédico está vinculada à localidade de Palmas/TO. A distribuição abaixo considera as modalidades de concorrência indicadas no Anexo II do edital.

Requisitos, jornada e remuneração

O cargo exige curso superior em Ciências Biomédicas (biomedicina) e registro profissional. A jornada é de 40 horas semanais, com vencimento inicial de R$ 4.917,01.

Atribuições do cargo

O biomédico poderá planejar, executar, acompanhar, avaliar e controlar atividades nas áreas de hemoterapia, hematologia, análises clínicas e procedimentos técnicos relacionados às diversas áreas da saúde, observadas a formação, a legislação profissional e os regulamentos do serviço.

Etapa do concurso

O concurso será realizado em etapa única: prova objetiva de múltipla escolha, com 60 questões e duração de 4 horas. Para os cargos de nível superior, como Biomédico, a prova será aplicada no turno vespertino, das 15h às 19h.

Conhecimentos gerais: 30 questões, valendo 30 pontos.
Conhecimentos específicos: 30 questões, valendo 60 pontos.
Pontuação máxima: 90 pontos.

Para aprovação, é necessário obter ao menos 24 pontos em conhecimentos específicos e 36 pontos no total da prova.

O que estudar para Biomedicina

Nos conhecimentos gerais, o edital prevê Língua Portuguesa, Matemática e Raciocínio Lógico, História e Geografia do Tocantins e Legislação do SUS.

Nos conhecimentos específicos, a preparação deve contemplar:

Bioquímica: dosagens hormonais e enzimáticas, eletroforese, lipoproteínas, proteínas, equilíbrio ácido-base, água e radicais livres.
Hematologia e automação em hematologia.
Imunologia, incluindo alergias, função imune, carcinogênese, doenças autoimunes e leucemias.
Microbiologia da água, alimentos e microbiologia médica.
Urinálise, coleta e conservação de amostras.
Preparo de vidrarias, reagentes, soluções e meios de cultura.
Princípios de equipamentos laboratoriais, como autoclaves, microscópios, centrífugas, espectrofotômetros, leitores de ELISA, termocicladores, citômetros de fluxo, cromatografia e eletroforese.
Ética profissional, qualidade e segurança no cuidado do paciente.

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Inscrições

As inscrições são realizadas exclusivamente pela internet, no site da FGV, das 22h de 10 de agosto de 2026 às 22h de 10 de setembro de 2026, no horário oficial de Palmas/TO.

A taxa de inscrição para os cargos de nível superior é de R$ 150,00, com pagamento até 11 de setembro de 2026.

Datas para anotar

Inscrições: 10/08/2026, às 22h, até 10/09/2026, às 22h
Pagamento da taxa: até 11/09/2026
Prova objetiva: 01/11/2026, das 15h às 19h para Biomédico

Onde acompanhar

As atualizações, comunicados, cronograma e documentos do concurso devem ser acompanhados na página oficial da FGV: https://conhecimento.fgv.br/concursos/sesto26/

Atenção: antes de se inscrever, leia o edital completo, confirme os requisitos do cargo, a localidade de lotação escolhida e as regras de concorrência. A cidade de realização da prova é independente da localidade da vaga e não poderá ser alterada posteriormente.

17 vagas para Biomédico no Concurso Público da SESAU/AL 2026

2026-08-22T07:42:08.415-03:00

Foi publicado o edital do concurso da Secretaria de Estado da Saúde de Alagoas (SESAU/AL). Para quem é biomédico, são 17 vagas imediatas e formação de cadastro de reserva para o cargo de Especialista em Saúde - especialidade Biomedicina.

A seleção é executada pelo Cebraspe e prevê provas objetivas, prova discursiva e avaliação de títulos. As oportunidades estão distribuídas em diferentes regiões do estado, o que amplia as possibilidades para quem deseja ingressar na rede estadual de saúde.

Vagas

O cargo exige graduação em Biomedicina reconhecida pelo MEC e registro no órgão de classe de Alagoas. A jornada é de 40 horas semanais.

Remuneração

A remuneração prevista para Especialista em Saúde - Biomedicina é de R$ 5.757,15, para jornada de 40 horas semanais.

Etapas do concurso

A seleção terá as seguintes fases:

· Provas objetivas, de caráter eliminatório e classificatório;

· Prova discursiva, de caráter eliminatório e classificatório;

· Avaliação de títulos, de caráter classificatório para os cargos de Especialista em Saúde.

As provas objetivas terão 120 itens no modelo CERTO ou ERRADO: 50 de conhecimentos básicos e 70 de conhecimentos específicos. Para a especialidade de Biomedicina, as provas e a discursiva serão aplicadas no turno da manhã, com duração total de 4 horas e 30 minutos.

O que estudar para Biomedicina

Nos conhecimentos básicos, o edital prevê Língua Portuguesa, Ética no Serviço Público, Legislação Estadual e Legislação aplicada ao SUS. Atualidades será cobrada somente na prova discursiva.

Nos conhecimentos específicos, os tópicos incluem bioquímica, hematologia, imunologia, microbiologia da água, alimentos e clínica, urinálise, coleta e conservação de amostras, preparo de reagentes e meios de cultura, princípios de equipamentos laboratoriais e ética profissional.

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Prova discursiva

A prova discursiva valerá 30 pontos e consistirá em um texto dissertativo de até 30 linhas sobre tema de atualidades. Para aprovação nessa etapa, será necessário obter ao menos 15 pontos.

Inscrições

As inscrições devem ser realizadas exclusivamente pela internet, no site do Cebraspe, de 20 de julho a 26 de agosto de 2026, das 10h do primeiro dia às 18h do último dia, no horário oficial de Brasília.

A taxa de inscrição para o cargo de Especialista em Saúde é de R$ 160,00. O pagamento poderá ser efetuado até 28 de agosto de 2026.

Datas para anotar

Inscrições: 20/7 a 26/8/2026
Pagamento da taxa: até 28/8/2026
Consulta aos locais de prova: 16/10/2026
Provas objetivas e discursiva: 01/11/2026

Onde acompanhar

Todas as atualizações, comunicados e editais subsequentes devem ser acompanhados na página oficial do concurso: cebraspe.org.br/concursos/sesau_al_26.

Atenção: Antes de se inscrever, leia o edital completo e confirme os requisitos do cargo, a localidade de vaga escolhida e as regras de concorrência.

Alteração morfológica das hemácias

2026-08-01T19:47:00.000-03:00

O eritrócito normalmente possui a forma de um disco bicôncavo.

Quando visto de frente apresenta uma região central mais clara (halo) do que a da zona periférica. Isto decorre em virtude da distribuição da hemoglobina em seu interior.

Dá-se o nome de poiquilocitose às alterações morfológicas dos eritrócitos.

Confira os principais tipos de poiquilocitose.

Codócitos

Sinônimo de hemácias em alvo.

A hemácia apresenta dupla biconcavidade de tal maneira que, quando projetada em um plano, a hemoglobina é visualizada em uma pequena faixa periférica e, geralmente, na parte central, o que lhe dá o aspecto “em alvo”.

Podem ser encontrados nas hemoglobinopatias (SS, SC), talassemias, hepatopatias, em pacientes esplenectomizados e na anemia ferropriva.

Esferócitos

São eritrócitos com a biconcavidade reduzida.

Quando visualizados no microscópio perdem a zona clara central, são mais densos e ocorre redução do diâmetro, em comparação com os demais eritrócitos. Por isso, também são chamados de microesferócitos.

Pode ser causado por defeitos genéticos nas proteínas de membrana ou pode ser adquirida, aparecendo nos casos de anemia hemolítica autoimune.

Eliptócitos/Ovalócitos

São eritrócitos que apresentam formas ovaladas e eliptocíticas.

As causas dessa alteração são defeitos genéticos nas proteínas do citoesqueleto da célula.

Na eliptocitose hereditária praticamente todas as hemácias têm essa forma.

Porém, pode ser encontrada uma pequena quantidade de eliptócitos/ovalócitos nas talassemias, anemia ferropriva e anemia megaloblástica.

Estomatócitos

São eritrócitos com o halo central semelhante a uma boca de peixe. O termo stoma significa boca.

Pode ser um artefato da distensão sanguínea. Pode estar presente em hepatopatias, sangue de recém-nascidos e na estomatocitose hereditária, uma anemia hemolítica congênita muito rara.

Drepanócitos

Sinônimo de hemácias em forma de foice.

Os eritrócitos adquirem essa forma devido a presença da Hemoglobina S, que polimeriza e se precipita na membrana da célula, ocasionando a deformação.

É encontrado nas doenças falciformes. Doença falciforme é um termo genérico que engloba um grupo de anemias hemolíticas crônicas hereditárias, dentre elas a anemia falciforme (saiba mais sobre a anemia falciforme).

Dacriócitos

São eritrócitos em forma de gota ou lágrima.

A deformação ocorre quando as células passam nas fenestrações entre cordões e sinus medulares do baço, sofrendo estiramento além dos limites da elasticidade.

É muito comum na mielofibrose, devido à hematopoese extramedular (o baço produz células sanguíneas devido a hipocelularidade da medula óssea).;

Pode ser encontrado também nas talassemias, anemias hemolíticas e em pacientes esplenectomizados.

Equinócitos

São hemácias com a membrana irregular, apresentando espículas regularmente distribuídas.

In vitro pode ser artefato. In vivo decorre de hiperuremia, tratamento com heparina IV, hipotireoidismo e após transfusões sanguíneas.

Acantócitos

São hemácias com a membrana irregular, apresentando espículas irregularmente distribuídas.

In vitro pode ser artefato. In vivo decorre de hepatopatias, diminuição da função do baço e esplenectomia.

Esquizócitos

São eritrócitos fragmentados, irregularmente contraídos e mordidos.

São causados por traumas mecânicos, válvulas cardíacas artificiais, agressão térmica nas queimaduras e agressão química pelo uso de fármacos oxidantes. Se a fragmentação for significativa, o paciente irá apresentar manifestações clínicas de anemia hemolítica.

Aparecem também em condições clínicas como coagulação intravascular disseminada (CIVD), púrpura trombocitopênica trombótica (PTT) e Síndrome Hemolítico-Urêmica (SHU).

Referências

Renato Failace. Hemograma – Manual de interpretação. Artmed, 5ª Ed., 2009.

Imagens: American Society of Hematology (Image Bank).

Biomedicina vale a pena? Tudo o que você precisa saber antes de entrar

2026-07-17T10:12:53.754-03:00

Escolher uma graduação é uma decisão séria.

E quando o assunto é Biomedicina, muita gente entra sem entender como é a rotina, quais áreas existem, quanto o profissional ganha e o que realmente acontece depois da matrícula.

Por isso criei este Guia. Para mostrar tudo isso com clareza, antes que você invista tempo, dinheiro e expectativa em uma escolha mal pensada.

Aqui você encontra uma visão prática e honesta sobre a profissão, o curso, o mercado de trabalho, as habilitações e os caminhos possíveis dentro da Biomedicina.

É um material feito para quem está decidindo o futuro e quer sair da dúvida com segurança.

Se você está no ensino médio, prestando vestibular ou pensando em mudar de curso, este guia vai te ajudar a entender se Biomedicina combina mesmo com o seu perfil.

Sem romantização, sem promessas vazias, só informação útil para decidir com mais consciência.

Acesse o guia e descubra, antes de começar a faculdade, se Biomedicina é a escolha certa para você.

Quero o Guia

Valor: de ~~R$ 47,99~~ por apenas R$ 27,99

Detalhes do Guia:

Formato do arquivo: PDF
Tamanho: 4,04 MB
Páginas: 27
Edição: 1ª edição
Garantia: 7 dias

O que é abordado dentro do Guia:

O que é Biomedicina
Como é a Graduação em Biomedicina

Estrutura geral do curso
Disciplinas típicas que você vai encontrar
EAD ou presencial?
Nota de corte e concorrência
Como saber se a IES é boa
Na prática, o que checar
Quanto realmente você vai gastar durante a graduação
Formas de reduzir o custo

Como conseguir o primeiro estágio
Como é a profissão no dia a dia
O que é uma habilitação e como obtê-la

O que é habilitação
Formas oficiais de obter uma habilitação
Como funciona a inclusão da habilitação

Diferenciando os termos

Principais áreas de atuação

Sobre as áreas menos óbvias

Quanto ganha um biomédico

Faixa geral (todas as áreas, CLT)
Por área de atuação (médias aproximadas)
Por que os valores variam tanto
Quanto tempo demora para ganhar bem

O mercado está em expansão?
Biomedicina x outros cursos da saúde parecidos

Como pensar sobre a escolha

Biomedicina Estética

Como se habilitar
Biomédico esteta ≠ esteticista
Um ponto importante
Mercado e remuneração

Concursos públicos

Onde costumam surgir vagas
Faixa salarial
O que pesa contra

Mestrado, doutorado e carreira acadêmica

Caminhos possíveis com mestrado/doutorado
Vale a pena?

Um dia na vida de... (três áreas diferentes)

Análises Clínicas
Biomedicina Estética
Perícia criminal

Perfil dos estudantes que se arrependem
Perfil dos biomédicos que tiveram sucesso
Erros comuns de quem escolhe sem pesquisar
O que ninguém conta sobre Biomedicina
Isso é para você? (checklist pontuado)
Perguntas frequentes
Fontes e referências

Quero o Guia

O que fazer quando ocorre um erro no laboratório clínico?

2026-04-23T22:39:58.313-03:00

O que fazer quando você comete um erro no laboratório?

Se você trabalha em um laboratório clínico sabe que diariamente temos que tomar decisões que podem impactar diretamente os resultados das análises.

Um bom laboratório deve sempre prezar pela precisão e exatidão dos resultados e padronização das técnicas e procedimentos.

Mesmo assim, erros podem acontecer em diferentes etapas das fases pré-analítica, analítica e pós-analítica.

Mas, além de evitar que o erro aconteça, é importante que você como biomédico saiba como agir quando ele ocorre.

Os problemas causados pelo erro podem ser agravados por situações como:

Demora em agir
Falha de comunicação
Não registrar o que aconteceu
Tentar corrigir "escondido"

Como consequência, isso pode comprometer a segurança do paciente, aumentar o retrabalho, perder amostras, gerar resultados errados, impactar na confiabilidade do laboratório e ter implicações éticas e legais para você e o laboratório.

Quando o laboratório não tem um fluxo definido de ação cada profissional faz do seu jeito e isso leva a decisões e condutas inadequadas.

Infelizmente, não ensinam isso para a gente quando estamos na graduação, ou mesmo quando estamos no início da carreira.

Exemplo prático: erro identificado após liberação do laudo

Digamos que você trabalha em um laboratório hospitalar e liberou um laudo com resultado errado.

O médico ligou questionando esse resultado e você viu que foi um erro de digitação.

Se você não sabe como agir, várias dúvidas vão surgir como:

Posso retirar o resultado do sistema e corrigi-lo?
Como devo fazer a retificação do laudo?
Devo comunicar ao paciente sobre o erro?
Como faço para registrar essa ocorrência?

Sem um fluxo ou guia para te direcionar, a ação corretiva (ou a falta dela) pode piorar a situação e, em última instância, causar um dano ao paciente.

Protocolo de ação rápida para erros no laboratório

Pensando nisso, criei o Protocolo de Ação Rápida para Erros no Laboratório.

Nele você encontra um passo a passo de como lidar com esses erros, incluindo critérios para avaliar o impacto clínico e orientação de como fazer a comunicação adequada com médico e/ou paciente.

O conteúdo foi elaborado com base na minha rotina dentro de um laboratório clínico, trabalhando como responsável pela Gestão da Qualidade, com foco na aplicabilidade prática imediata.

Quero o protocolo

Somente R$ 37,00

Ele é composto por 5 capítulos:

❌ Capítulo 1 - Tipos de erro no laboratório
🆘 Capítulo 2 - O que fazer na hora do erro - Protocolo de ação rápida
❗ Capítulo 3 - Como avaliar o impacto clínico do erro
📞 Capítulo 4 - Como se comunicar com médicos/pacientes

Além disso, você terá acesso aos seguintes bônus:

Bônus 1 - Checklist para imprimir
Bônus 2 - Fluxograma visual
Bônus 3 - Formulário de não conformidade
Bônus 4 - Top 10 erros mais comuns no laboratório

O material é direcionado a biomédicos, farmacêuticos, profissionais de análises clínicas, residentes e estudantes que desejam aprimorar sua atuação frente a situações críticas.

Com o protocolo, você será capaz de:

Identificar rapidamente o tipo de erro
Classificar o nível de impacto (baixo, moderado ou alto)
Saber quando comunicar equipe, médico e paciente
Agir corretamente mesmo com laudo já liberado
Aplicar um fluxo claro do início ao fim

O que você recebe:

Protocolo completo de ação imediata
Fluxograma prático para tomada de decisão
Checklist operacional
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Estrutura aplicável na rotina do laboratório

Investimento: R$ 37,00

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O acesso é imediato após a compra e o material pode ser utilizado tanto no computador quanto no celular.

Agora a escolha é sua

Você pode continuar lidando com erros na base da dúvida, tomando decisões sem um padrão definido.

Ou pode ter um protocolo claro e agir com segurança em qualquer situação.

Analisador hematológico de 3 Partes vs 5 Partes: quando é obrigatório fazer revisão de lâmina no hemograma?

2026-02-13T16:13:00.003-03:00

Resumo

Analisadores hematológicos de 3 partes diferenciam leucócitos apenas em linfócitos, monócitos e granulócitos, exigindo lâmina obrigatória para todos os pacientes.

Já os de 5 partes identificam os cinco tipos principais de leucócitos e utilizam tecnologias adicionais como óptica e fluorescência, permitindo critérios seletivos para revisão em lâmina.

A escolha do fluxo depende diretamente do tipo de equipamento disponível no laboratório.

Para começar

A primeira informação que você precisa ter é: qual o analisador hematológico (contador automatizado de células sanguíneas) tem no seu laboratório.

Isso por que, de modo geral, podemos dividi-los em duas categorias:

Analisadores hematológicos de 3 partes (3-part diff);
Analisadores hematológicos de 5 partes (5-part diff).

E isso determina qual caminho você irá seguir!

Se você tem um analisador hematológico de 3 partes

Os analisadores hematológicos de 3 partes, geralmente, são usados em laboratórios de pequeno porte.

Eles têm uma limitação de metodologias e não conseguem fazer a contagem diferencial de leucócitos completamente.

Isso por que eles usam o princípio da impedância elétrica (Princípio de Coulter) para contar e classificar as células.

Então eles conseguem diferenciar linfócitos, monócitos e granulócitos; mas não conseguem separar quais tipos de granulócitos (se são neutrófilos, eosinófilos ou basófilos). Por isso falamos em 3 partes.

Se você entrou num laboratório que usa esse tipo de equipamento, não tenho uma boa notícia.

Você terá que, obrigatoriamente, fazer a lâmina de todos os pacientes para chegar no resultado completo do leucograma.

Curso de Interpretação do Hemograma

No meu estágio da graduação, havia no laboratório um ABX Micros 60, da Horiba, e ele é um analisador hematológico de 3 partes. Ou seja, tínhamos que fazer e ler as lâminas de todos os pacientes.

Se você tem um analisador hematológico de 5 partes

Os analisadores hematológicos de 5 partes são mais modernos e usam uma combinação de várias metodologias como impedância, óptica e fluorescência.

Com isso, eles conseguem fazer uma análise mais detalhada, como:

Impedância → contagem básica;
Óptico → contagem diferencial;
Fluorescência → análise de RNA/DNA.

E, além de conseguir identificar os 5 tipos principais de leucócitos, eles podem contar também reticulócitos, plaquetas imaturas, eritroblastos e células anormais com mais sensibilidade.

Sendo assim, não é necessário fazer e revisar a distensão (esfregaço/extensão) sanguínea de todos os pacientes.

Você pode estipular critérios para confecção da lâmina (e deixar registrado no POP).

Por exemplo, se uma amostra é considerada negativa (sem alterações) você pode seguir para a etapa de conferência e liberação com tranquilidade.

Mas, dependendo dos alertas (flags) liberados pelo analisador, você deve avaliar se será necessário ou não fazer a lâmina.

Alguns exemplos de resultados do analisador que podem ser utilizados como critérios para fazer a lâmina:

Leucócitos ≥ 15.000/µL em adultos;
Hemoglobina ≤ 6,0 g/dL no primeiro exame;
Alterações visuais nos gráficos;
Granulócitos imaturos;
Presença de eritroblastos;
Flags para linfócitos atípicos ou anormais, blastos, desvio à esquerda, etc.

Lembrando que a revisão da lâmina envolve não só os leucócitos, mas também alterações nas hemácias e plaquetas.

Quando NÃO é necessário fazer a lâmina?

Amostras sem alterações;
Resultados dentro dos valores de referência;
Ausência de flags ou alertas do equipamento;
Gráficos (histogramas/dispersogramas) normais.

O que deve ser avaliado na revisão da lâmina?

A revisão não envolve apenas leucócitos. Deve incluir:

Morfologia eritrocitária (anisocitose, poiquilocitose etc.);
Avaliação de plaquetas (agregados, macroplaquetas);
Pesquisa de hemoparasitas;
Avaliação de células imaturas ou displásicas.

Aplicações práticas na rotina laboratorial

Definição de fluxo técnico;
Criação de critérios objetivos no POP;
Redução de retrabalho;
Otimização do tempo da equipe;
Padronização da revisão microscópica.

Perguntas Frequentes

1. Todo laboratório com 5-part diff pode deixar de fazer lâmina?

Não. A lâmina deve ser feita conforme critérios técnicos e presença de flags.

2. Um analisador de 3 partes pode detectar leucemia?

Pode sugerir alteração pela contagem global, mas a confirmação depende da lâmina.

3. O 5-part diff elimina completamente a análise manual?

Não. Ele reduz a necessidade, mas não substitui a avaliação morfológica quando indicada.

4. É obrigatório ter critérios documentados?

Sim. Os critérios devem estar formalizados no POP para garantir rastreabilidade e qualidade.